Propagation and Rooting of Abelia grandiflora by Tissue Culture Method

Öz

Since Abelia grandiflora is an important ornamental plant in areas such as landscaping, health and chemistry, it was thought that it should be propagated by plant tissue culture method, which is an advantageous method in terms of disease-free and rapid plant propagation. It was aimed to find the most suitable medium content for the propagation and rooting of Abelia grandiflora plant using tissue culture method. Samples taken from Abelia grandiflora were subjected to sterilization process. New shoots were obtained from the plants that were planted after sterilization and from the plants that remained sterile. In the shoot propagation medium experiment, plants were planted in 5 different groups, with 5 jars in each group and 5 explants in each jar. Plants were planted in 7 different groups for rooting, with 5 jars from each group and 5 explants in each jar. Measurements of plants subjected to shoot propagation medium experiment and root experiment were made on the 50th day. Trial randomized plots were subjected to Duncan multiple comparison test with 5 replications and analyses were performed with SPSS 2.1 program. As a result of the study, it was determined that the most suitable propagation for Abelia grandiflora plant was in Mod MS (modified Murashige and Skoog) medium containing 2.00 mg/L BAP (3.25 units/plant and 8.10 mm shoot length). Considering the stem thickness, it was seen that the best medium was in Mod MS medium containing 2.00 mg/L BAP (0.90 mm stem thickness). It was determined that the best rooting was in ½ Mod MS medium containing 0.50 mg/L IBA (4.60 units/plant). This study is the first study conducted in our country on the in vitro propagation of Abelia grandiflora.

Anahtar Kelimeler

• Abelia grandiflora
• plant tissue culture
• micropropagation
• in vitro.

Abelia grandiflora’nın Doku Kültürü Yöntemi ile Çoğaltılması ve Köklendirilmesi

Öz

Abelia grandiflora bitkisi, peyzaj, sağlık ve kimya gibi alanlarda önemli bir süs bitkisi olduğu için, hastalıksız ve hızlı bitki çoğaltımı açısından avantajlı yöntem olan bitki doku kültürü yöntemiyle çoğaltılması gerektiği düşünülmüştür. Abelia grandiflora bitkisinin doku kültürü yöntemi kullanılarak çoğaltımı ve köklenmesi için en uygun ortam içeriğinin bulunması amaçlanmıştır. Abelia grandiflora bitkisinden alınan örnekler sterilizasyon işlemine tabi tutulmuştur. Sterilizasyon sonrası ekimi yapılan bitkilerden, steril kalan bitkilerden yeni sürgünler elde edilmiştir. Sürgün çoğaltımı ortam denemesinde bitkiler 5 farklı gruba her gruba 5‘er kavanoz ve her bir kavanozda 5 eksplant olacak şekilde ekilmiştir. Bitkilerin köklenmesi için ekimi 7 farklı gruba, her gruptan 5’er kavanoz ve her kavanoza 5’er eksplant olacak şekilde yapılmıştır. Sürgün çoğaltımı ortam denemesi ve kök denemesine tabi tutulan bitkilerin ölçümleri 50. günde yapılmıştır. Deneme tesadüfi parselleri 5 tekrarlı olarak Duncan çoklu karşılaştırma testine tabi tutulmuş olup analizleri SPSS 2.1 programı ile yapılmıştır. Yapılan çalışma sonucunda Abelia grandiflora bitkisi için en uygun çoğaltımın 2.00 mg/L BAP içeren (3.25 adet/bitki ve 8.10 mm sürgün boyu) Mod MS (modifiye Murashige ve Skoog) besi ortamında olduğu tespit edilmiştir. Gövde kalınlığı dikkate alındığında ise en iyi ortamın 2.00 mg/L BAP içeren (0.90 mm gövde kalınlığı) Mod MS besi ortamında olduğu görülmüştür. En iyi köklenmenin 0.50 mg/L IBA içeren (4.60 adet/bitki) ½ Mod MS besi ortamında olduğu belirlenmiştir. Bu çalışma, Abelia grandiflora bitkisinin in vitro çoğaltımı üzerine ülkemizde yapılan ilk çalışma olmaktadır.

Anahtar Kelimeler

• Abelia grandiflora
• bitki doku kültürü
• mikroçoğaltım
• in vitro.

Kaynakça

1. [1] Seçmen, Ö., Gemici, Y., Görk, G., Bekat, L., Leblebici, E. (2008). Tohumlu Bitkiler Sistematiği. Ege Üniversitesi Basımevi, İzmir.
2. [2] Wiktionary. (2020). https://tr.wiktionary.org/wiki/ (13.04.2025).
3. [3] Onur Peyzaj Bitki Kataloğu. (2023-2026). Abelia. https://www.onurpeyzaj.com/ (10.04.2025)
4. [4] Jahan, I., Onay, A. (2020). Potentials of plant-based substance to inhabit and probable cure for the COVID-19. Turkish Journal of Biology, 44(3), 228-241.
5. [5] Karataş, İ. (2021). Rubia tinctorum L. (Kökboya) Bitkisinin in vitro Kök Kültürlerinde Hormon ve Eksplant Kaynaklarının Sekonder Metabolit Üretimi ve Antioksidan Aktivitelerine Etkileri. KSÜ Tarım ve Doğa Derg., 24(5), 939-947.
6. [6] Sharma, G., Jasuja, N.D., Rajgovind, R., Singhal, P., Joshi, S.C. (2014). Synthesis, Characterization and Antimicrobial Activity of Abelia grandiflora Assisted AgNPs. Microbial & Biochemical Technology, 6(5), 274-278.
7. [7] Jacygrad, E., Ilczuk, A., Mikos, M., Jagiello-Kubiec, K. (2012). Effect of medium type and plant growth regulators on the in vitro shoot proliferation of Cotinus coggygria Scop. 'Royal Purple'. Acta Scientiarum Polonorum,11(5), 143-151.
8. [8] Akdemir, H., Akbulak, T., Süzerer, V., Kayıhan, D., Koç, İ., Çiftçi, Y.Ö. (2016). Farklı sitokinin ve şeker türlerinin alev ağacı bitkisininin vitro çoğaltımına olan etkileri. Anadolu Tarım Bilimleri Dergisi, 31(2), 248-255.

9. [9] Naranjo, L.L., Robacker, C.D. (2018). Developing A Micropropagation Protocol For Abelia ‘Raspberry Profusion’. American Society For Horticultural Science, Washington D.C.
10. [10] Yılmaz, S.S., Altun, B., Çelik, H., Gümüş, H., Eminağaoğlu, Ö., Türet, M., Yücel, T., Kaya, İ.T. (2018). Rhododendron smirnowii Trautv.’nin Sürgün Ucu Kültürü ile Mikroçoğaltımı. International Journal of Agricultural and Natural Sciences, 1(3), 208-211.
11. [11] Dilmen, R., Baydar, N.G. (2020). Yağ Gülü (Rosa damascena Mill.)’nün Mikroçoğaltımında En Uygun Sürgün ve Köklenme. Süleyman Demirel Üniversitesi Fen Bilimleri Enstitüsü Dergisi, 24(1), 209-216.
12. [12] Babalı, N. (2020). Nandina domestica (Cennet Bambusu) ve Loropetalum chinense (Çin Püskülü) Türlerinin Mikroçoğaltım Çalışmaları. (Yüksek lisans Tezi). Sakarya Üniversitesi, Fen Bilimleri Enstitüsü. Sakarya, 91s.
13. [13] Babalı, N., Demir, T. (2020). A Research on Micropropagation of Loropetalum chinense. Journal of Agricultural Biotechnology, 1(1), 12-17.
14. [14] Ramirez-Malagon, R., Borodanenko, A., Barrera-Guerra, J.L., Onchoa-Alejo, N. (1997). Micropropagation for fraser photinia (Photinia fraseri). Plant Cell, Tissue and Organ Culture, 48, 219-222.
15. [15] Tilkat, E. (2006). Erkek antepfıstığı (Pistacia vera L. cv. atlı) ağaçlarının in vitro mikroçoğaltılması (Doktora Tezi). Dicle Üniversitesi, Fen Bilimleri Enstitüsü, Diyarbakır, 144s.
16. [16] Bag, N., Palni, M. (2010). A two-step procedure for in vitro rooting of micropropagated tea [Camellia sinensis L. (O) Kuntze] microshoots. The Journal of Horticultural Science and Biotechnology, 85(3), 197-204.
17. [17] Hui, J.X., Wen, S.C., Hua, Z.Y., Ming, L.X. (2012). Lonicera japonica Thunb.'un mikroçoğaltımı ve iklime uyumu için farklı yöntemler üzerine karşılaştırmalı çalışma. Journal of Medicinal Plants Research, 6(27), 4389-4393.
18. [18] Ekbiç, H.B., Yılmaz, G. (2018). Kokulu Kara Üzümün (Vitis labrusca L.) Mikro Çelik Kültürü ile Mikro Çoğaltımı. Van Yüzüncü Yıl Üüniversitesi Tarım Bilimleri Dergisi, 28(1), 86-91.
19. [19] ShuiGen, L., Yuan, G., JiKai, L., XiuYun, L., Xiufen, L., JianJun, Z. (2018). The study of direct shoot regeneration from lamina explants of Abelia grandiflora. Acta Agriculturae Shangha, 34(5), 44-48.
20. [20] Loconsole, D., Cristiano, G., Lucia, B.D. (2022). Analysis of Adventitious Root Quality in Wild Sage and Glossy Abelia Cuttings after Application of Different Indole-3-Butyric Acid Concentrations. Plants, 11(3), 1-14.