Araştırma Makalesi
BibTex RIS Kaynak Göster

Sezon Dışı Pırlak Koç Sperma Sulandırıcısına İlave Edilen Lipoik Asid ve Trolox’un Dondurma ve Çözdürme Sonrası Spermatolojik Parametreler, Oksidatif Stres ve DNA Hasarı Üzerine

Yıl 2019, , 363 - 369, 30.09.2019
https://doi.org/10.30607/kvj.592883

Öz

Bu çalışmanın amacı sezon dışı dönemde Pırlak koç sperma
sulandırıcısına ilave edilen trolox ve alfa lipoik asitin (ALA) çözüm sonu
spermatolojik parametreler, oksidatif stres ve DNA hasarı üzerine etkileri
araştırıldı. Çalışmada sperma örnekleri 5 sağlıklı Pırlak koçtan (2-3 yaş) elde
edildi ve her koçtan 6 ejakulat toplanarak karıştırıldı. Ejakulatlar ml’de
150x106 spermatozoon olacak şekilde antioksidan içermeyen (kontrol)
ve antioksidan içeren 1 mM ALA ve 1 mM trolox sulandırıcılar ile sulandırıldı.
Sulandırılan örnekler 0,25 ml’lik payetlerde 5 0C’de 3 saat
ekilibrasyona tabi tutularak  sıvı azot
buharında donduruldu,37 oC'de çözdürülerek spermatolojik
parametreler, DNA hasarı, oksidatif stres açısından değerlendirildi. ALA
grubunda kontrol grubuna göre spermatozoa motilitesi, akrozom ve DNA
bütünlüğü  istatistiki (p<0.05) olarak daha yüksek bulundu. Trolox
grubunda kontrol grubuna göre daha yüksek akrozom ve membran bütünlüğü ile  daha az DNA hasarı tespit edildi.  (p<0.05) . Kontrol
grubu ile karşılaştırıldığında, ALA ve trolox gruplarındaki oksidatif stres
parametrelerindeki azalmalar istatistikî olarak önemli (P<0.05) bulundu. Bu
çalışmanın sonuçlarına göre üreme mevsimi dışında Pırlak koç sperma
sulandırıcısına ilave edilen ALA ve troloxun çözüm sonu spermatolojik
parametreleri, oksidatif stresi ve DNA hasarına karşı koruyucu bir etki
gösterdiği kanaatine varıldı.

Destekleyen Kurum

Afyon Kocatepe Üniversitesi Bilimsel Araştırma Projeleri Koordinasyon Birimi

Proje Numarası

17.KARİYER.78

Teşekkür

Bu çalışma Afyon Kocatepe Üniversitesi Bilimsel Araştırma Projeleri Koordinasyon Birimi tarafından 17.KARİYER.78 nolu proje ile desteklenmiştir.

Kaynakça

  • Agarwal A, Saleh RA, Bedaiwy MA. Role of reactive oxygen species in the pathophysiology of human reproduction. Fertil Steril. 2003; 79: 829–843.
  • Akiyama M. In vivo scavenging effects of ethylcysteine on reactive oxygen species in human semen. Nippon Hinyokika Gakkai Zasshi. 1999; 90: 421–428.
  • Akman O. Swiss Albino Irkı Farelerde Sperma Kalitesinin Belirlenmesi Amacıyla Hos Testi Sonuçları ve Diğer Spermatolojik Parametreler Arasındaki İlişkinin Araştırılması. Doktora Tezi Selçuk Ü. Sağ. Bil. Enst. 2007.
  • Andreea A, Stela, Z. Role of antioxidant additives in the protection of the cryopreserved semen against free radicals. Romanian Biotechnological Letters. 2010; 15 (3): 33-41.
  • Anghel A, Zamfırescu S, Coprean D, Sogorescu E. The effects of cysteın, bovıne serum albumın and vıtamın e on the calıtatıve parameters of frozen-thawed ram semen. Annals of RSCB. 2010; 16 (2): 26-32.
  • Bailey JL, Bılodeau JF. Cormeir Semen Cryopereservation in domestic animals: A Damaging and Capacitating Phenomenon J. of And. 2000; 21 (1): 1-7.
  • Başpınar N, Çoyan K, Bucak MN, Ömür AD, Ataman MB, Akalın PP, Güngör Ş, Öztürk C. Koç spermasının ekilibrasyon ve dondurma-çözdürme sonrası spermatolojik ve biyokimyasal parametreleri üzerine lipoik asitin etkisi. Eurasian J. Vet. Sci. 2011; 27 (2): 87-92.
  • Bılodeau JF, Blanchette S, Gagnon C, Sırard MA. Thiols prevent H2O2-mediated loss of sperm motility in cryopreserved bull semen. Theriogenology. 2001; 56 (2): 275–286.
  • Carreau JP. Biosynthesis of lipoic acid via unsaturated fatty acids. Methods Enzymol. 1979; 62: 152-158.
  • Chen Y, Foote RH, Brockett CC. Effect of Sucrose, Trehalose, Hypotaurine, Taurine and Blood Serum on Survival of Frozen Bull Sperm. Crybiology. 1993; 30: 423-431.
  • Deıchsel K, Palm F, Koblıschke P, Budık S, Aurıch C. Effect of a dietary antioxidant supplementation on semen quality in pony stallions. Theriogenology. 2008; 69: 940–945.
  • Demirci E. Evcil hayvanlarda reprodüksiyon, sun’i tohumlama ve androloji ders notları (1nd ed). F.Ü.Vet.Fak., Ders Teksiri No:53 Elazığ. 2002.
  • Draper HH, Hadley M. Malondialdehyde determination as index of lipid peroxidation. Methods Enzymol. 1990; 186: 421−430.
  • Gündoğan M, Avdatek F, Yeni D. Effect of extenders on motility, morphology and osmotic resistance parameters of ram sperm during liquid storage. Revue Méd. Vét. 2011; 162 (11): 546-551.
  • Gündoğan M, Yeni D, Avdatek F, Fidan AF. Influence of sperm concentration on the motility, morphology, membrane and DNA integrity along with oxidative stress parameters of ram sperm during liquid storage. Anim. Reprod. Sci. 2010; 122: 200-207.
  • Hughes CM, Mckelvey-Martın VJ, Lewıs SEM. Human sperm DNA integrity assessed by the Comet and ELISA assays. Mutagenesis 1999; 14 (1): 71–75.
  • Ibrahım SF, Osman K, Das S, Othman AM, Majıd NA, Rahman MPA. A study of the antioxidant effect of alpha lipoic acids on sperm quality. Clinics. 2008; 63: 545-50.
  • O’Flaherty CM., Beconi MT., Beorlegui NB., Effect of natural antioxidants, superoxide dismutase and hydrogen peroxide on capacitation of frozen-thawed bull spermatozoa. Andrologia. 1997; 29: 269-275.
  • Özden S, Catalgol B, Gezcinci S, Arda P, Bolkent S, Alpertunga B. Methiocarb-induced oxidative damage following subacute exposure and the protective effects of vitamin E and taurine in rats. Food and Chemical Toxicology. 2009; 47: 1676-1684.
  • Packer L, Wıtt EH, Trıtschler HJ. Alpha-lipoic acid as a biological antioxidant. Free Radic. Biol. Med.1995; 19: 227-250.
  • Rıce D, Kennedy S. Vitamin E: function and effects of deficiency. Br. Vet. J. (1988; 144: 482-492.
  • Schafer S, Holzmann A. The use of transmigration and Spermac TM stain to evaluate epididymal cat spermatozoa. Anim. Reprod. Sci. 2000; 59: 201-211.
  • Sedlak J, Lındsay RHC. Estimation of total, protein bound and nonprotein sulfhydryl groups in tissue with Ellmann’s reagent. Anal. Biochem. 1968; 25: 192–205.
  • Selvakumar E, Prahalathan C, Mythılı Y, Varalakshmı P. Beneficial effects of Dl-α-lipoic acid on cyclophosphamide-induced oxidative stress in mitochondrial fractions of rat testis. Chemico-Biological Interactions. 2005; 152: 59–66.
  • Shıva SRN, Jagan M, Atreja SK. Effect of adding taurine and trehalose to a tris-based egg yolk extender on buffalo (Bubalus bubalis) sperm following cryopreservation. Anim. Reprod. Sci. 2010; 119: 183-190.
  • Sıcherle CC, Maıa MS, Bıcudo SD, Rodello L, Azevedo HC. Lipit peroxidation and generation of hydrogen peroxide in frozen-thawed ram semen supplemented with catalase or Trolox. Small Rum. Res. 2011; 95: 144–149.
  • Sılva MS, Bıcudo SD, Sıcherle CC, Rodello L, Gallego IC. Lipit peroxidation and generation of hydrogen peroxidein frozen-thawed ram semen cryopreserved in extenders with antioxidants. Anim. Reprod. Sci. 2010; 122: 118-123
  • Sıngh NP, Muller CH, Berger RE. Effects of age on DNA double-strand breaks and apoptosis in human sperm. Fertil. Steril. 2003; 80 (6): 1420-1430.
  • Sınha MP, Sınha AK, Prasad RL The effect of glutathione on motility, enzyme leakage and fertilility of frozen goat semen. Anim. Reprod. Sci. 1996; 41: 237-243.
  • Suzukı YJ, Tsuchıya M, Packer L. Thioctic acid and dihydrolipoic acid are novel antioxidants which interact with reactive oxygen species. Free. Rad. Res. Commun. 1991; 15: 255-263.
  • Trounson AO. Cryopresrevation. Brit. Med. Bull. 1990; 147: 427-433.

Influence of Trolox and Alpha-Lipoic Acid on Post-Thawed Pırlak Ram Sperm Parameters, Oxidative Stress and DNA Damage in Non-Breeding Season

Yıl 2019, , 363 - 369, 30.09.2019
https://doi.org/10.30607/kvj.592883

Öz

The present study was
conducted to examine the protective roles of trolox and alpha-lipoic on
post-thawed Pirlak ram sperm parameters, oxidative stress and DNA damage in
non-breeding season. Semen samples from 5 healty Pırlak rams (2-3 years of age)
were used in the study. Six ejaculates for each rams were collected and pooled.
Ejaculates were split into three aliquots and diluted to a final concentration
of 150x106 spermatozoa/ml with the base extender containing 1 mM
alpha lipoic acid, 1 mM trolox and no additive (control) were cooled to 5 °C
and equilibrated for 3 h then frozen in 0.25 ml French straws. Samples were
thawed in 37 oC and evaluated in terms of spermatological
parameters, DNA damage, oxidative stress. Sperm
motility was increased, acrosome rate and DNA damage were decreased
significantly
(p<0.05) in ALA, head
abnormal sperm rate and membrane integrity were increased, acrosome rate and
DNA damege were decreased significantly (P
< 0.05) in trolox when compared to the
control group. Compared with the control group, reductions in spermatozoon MDA
and GSH levels were statistically significant (P <0.05) in lipoic acid and
trolox groups. Results of this study suggest
that alpha-lipoic acid and trolox improve sperm parmeters, oxidative stress and
DNA damage in non-breeding season.

Proje Numarası

17.KARİYER.78

Kaynakça

  • Agarwal A, Saleh RA, Bedaiwy MA. Role of reactive oxygen species in the pathophysiology of human reproduction. Fertil Steril. 2003; 79: 829–843.
  • Akiyama M. In vivo scavenging effects of ethylcysteine on reactive oxygen species in human semen. Nippon Hinyokika Gakkai Zasshi. 1999; 90: 421–428.
  • Akman O. Swiss Albino Irkı Farelerde Sperma Kalitesinin Belirlenmesi Amacıyla Hos Testi Sonuçları ve Diğer Spermatolojik Parametreler Arasındaki İlişkinin Araştırılması. Doktora Tezi Selçuk Ü. Sağ. Bil. Enst. 2007.
  • Andreea A, Stela, Z. Role of antioxidant additives in the protection of the cryopreserved semen against free radicals. Romanian Biotechnological Letters. 2010; 15 (3): 33-41.
  • Anghel A, Zamfırescu S, Coprean D, Sogorescu E. The effects of cysteın, bovıne serum albumın and vıtamın e on the calıtatıve parameters of frozen-thawed ram semen. Annals of RSCB. 2010; 16 (2): 26-32.
  • Bailey JL, Bılodeau JF. Cormeir Semen Cryopereservation in domestic animals: A Damaging and Capacitating Phenomenon J. of And. 2000; 21 (1): 1-7.
  • Başpınar N, Çoyan K, Bucak MN, Ömür AD, Ataman MB, Akalın PP, Güngör Ş, Öztürk C. Koç spermasının ekilibrasyon ve dondurma-çözdürme sonrası spermatolojik ve biyokimyasal parametreleri üzerine lipoik asitin etkisi. Eurasian J. Vet. Sci. 2011; 27 (2): 87-92.
  • Bılodeau JF, Blanchette S, Gagnon C, Sırard MA. Thiols prevent H2O2-mediated loss of sperm motility in cryopreserved bull semen. Theriogenology. 2001; 56 (2): 275–286.
  • Carreau JP. Biosynthesis of lipoic acid via unsaturated fatty acids. Methods Enzymol. 1979; 62: 152-158.
  • Chen Y, Foote RH, Brockett CC. Effect of Sucrose, Trehalose, Hypotaurine, Taurine and Blood Serum on Survival of Frozen Bull Sperm. Crybiology. 1993; 30: 423-431.
  • Deıchsel K, Palm F, Koblıschke P, Budık S, Aurıch C. Effect of a dietary antioxidant supplementation on semen quality in pony stallions. Theriogenology. 2008; 69: 940–945.
  • Demirci E. Evcil hayvanlarda reprodüksiyon, sun’i tohumlama ve androloji ders notları (1nd ed). F.Ü.Vet.Fak., Ders Teksiri No:53 Elazığ. 2002.
  • Draper HH, Hadley M. Malondialdehyde determination as index of lipid peroxidation. Methods Enzymol. 1990; 186: 421−430.
  • Gündoğan M, Avdatek F, Yeni D. Effect of extenders on motility, morphology and osmotic resistance parameters of ram sperm during liquid storage. Revue Méd. Vét. 2011; 162 (11): 546-551.
  • Gündoğan M, Yeni D, Avdatek F, Fidan AF. Influence of sperm concentration on the motility, morphology, membrane and DNA integrity along with oxidative stress parameters of ram sperm during liquid storage. Anim. Reprod. Sci. 2010; 122: 200-207.
  • Hughes CM, Mckelvey-Martın VJ, Lewıs SEM. Human sperm DNA integrity assessed by the Comet and ELISA assays. Mutagenesis 1999; 14 (1): 71–75.
  • Ibrahım SF, Osman K, Das S, Othman AM, Majıd NA, Rahman MPA. A study of the antioxidant effect of alpha lipoic acids on sperm quality. Clinics. 2008; 63: 545-50.
  • O’Flaherty CM., Beconi MT., Beorlegui NB., Effect of natural antioxidants, superoxide dismutase and hydrogen peroxide on capacitation of frozen-thawed bull spermatozoa. Andrologia. 1997; 29: 269-275.
  • Özden S, Catalgol B, Gezcinci S, Arda P, Bolkent S, Alpertunga B. Methiocarb-induced oxidative damage following subacute exposure and the protective effects of vitamin E and taurine in rats. Food and Chemical Toxicology. 2009; 47: 1676-1684.
  • Packer L, Wıtt EH, Trıtschler HJ. Alpha-lipoic acid as a biological antioxidant. Free Radic. Biol. Med.1995; 19: 227-250.
  • Rıce D, Kennedy S. Vitamin E: function and effects of deficiency. Br. Vet. J. (1988; 144: 482-492.
  • Schafer S, Holzmann A. The use of transmigration and Spermac TM stain to evaluate epididymal cat spermatozoa. Anim. Reprod. Sci. 2000; 59: 201-211.
  • Sedlak J, Lındsay RHC. Estimation of total, protein bound and nonprotein sulfhydryl groups in tissue with Ellmann’s reagent. Anal. Biochem. 1968; 25: 192–205.
  • Selvakumar E, Prahalathan C, Mythılı Y, Varalakshmı P. Beneficial effects of Dl-α-lipoic acid on cyclophosphamide-induced oxidative stress in mitochondrial fractions of rat testis. Chemico-Biological Interactions. 2005; 152: 59–66.
  • Shıva SRN, Jagan M, Atreja SK. Effect of adding taurine and trehalose to a tris-based egg yolk extender on buffalo (Bubalus bubalis) sperm following cryopreservation. Anim. Reprod. Sci. 2010; 119: 183-190.
  • Sıcherle CC, Maıa MS, Bıcudo SD, Rodello L, Azevedo HC. Lipit peroxidation and generation of hydrogen peroxide in frozen-thawed ram semen supplemented with catalase or Trolox. Small Rum. Res. 2011; 95: 144–149.
  • Sılva MS, Bıcudo SD, Sıcherle CC, Rodello L, Gallego IC. Lipit peroxidation and generation of hydrogen peroxidein frozen-thawed ram semen cryopreserved in extenders with antioxidants. Anim. Reprod. Sci. 2010; 122: 118-123
  • Sıngh NP, Muller CH, Berger RE. Effects of age on DNA double-strand breaks and apoptosis in human sperm. Fertil. Steril. 2003; 80 (6): 1420-1430.
  • Sınha MP, Sınha AK, Prasad RL The effect of glutathione on motility, enzyme leakage and fertilility of frozen goat semen. Anim. Reprod. Sci. 1996; 41: 237-243.
  • Suzukı YJ, Tsuchıya M, Packer L. Thioctic acid and dihydrolipoic acid are novel antioxidants which interact with reactive oxygen species. Free. Rad. Res. Commun. 1991; 15: 255-263.
  • Trounson AO. Cryopresrevation. Brit. Med. Bull. 1990; 147: 427-433.
Toplam 31 adet kaynakça vardır.

Ayrıntılar

Birincil Dil Türkçe
Konular Veteriner Cerrahi
Bölüm ARAŞTIRMA MAKALESİ
Yazarlar

Fatih Avdatek 0000-0003-2345-8826

Deniz Yeni 0000-0002-9105-5677

Muhammed Kürşad Birdane 0000-0002-9683-4979

Mustafa Gündoğan Bu kişi benim 0000-0002-3292-4625

Proje Numarası 17.KARİYER.78
Yayımlanma Tarihi 30 Eylül 2019
Kabul Tarihi 29 Ağustos 2019
Yayımlandığı Sayı Yıl 2019

Kaynak Göster

APA Avdatek, F., Yeni, D., Birdane, M. K., Gündoğan, M. (2019). Sezon Dışı Pırlak Koç Sperma Sulandırıcısına İlave Edilen Lipoik Asid ve Trolox’un Dondurma ve Çözdürme Sonrası Spermatolojik Parametreler, Oksidatif Stres ve DNA Hasarı Üzerine. Kocatepe Veterinary Journal, 12(3), 363-369. https://doi.org/10.30607/kvj.592883
AMA Avdatek F, Yeni D, Birdane MK, Gündoğan M. Sezon Dışı Pırlak Koç Sperma Sulandırıcısına İlave Edilen Lipoik Asid ve Trolox’un Dondurma ve Çözdürme Sonrası Spermatolojik Parametreler, Oksidatif Stres ve DNA Hasarı Üzerine. kvj. Eylül 2019;12(3):363-369. doi:10.30607/kvj.592883
Chicago Avdatek, Fatih, Deniz Yeni, Muhammed Kürşad Birdane, ve Mustafa Gündoğan. “Sezon Dışı Pırlak Koç Sperma Sulandırıcısına İlave Edilen Lipoik Asid Ve Trolox’un Dondurma Ve Çözdürme Sonrası Spermatolojik Parametreler, Oksidatif Stres Ve DNA Hasarı Üzerine”. Kocatepe Veterinary Journal 12, sy. 3 (Eylül 2019): 363-69. https://doi.org/10.30607/kvj.592883.
EndNote Avdatek F, Yeni D, Birdane MK, Gündoğan M (01 Eylül 2019) Sezon Dışı Pırlak Koç Sperma Sulandırıcısına İlave Edilen Lipoik Asid ve Trolox’un Dondurma ve Çözdürme Sonrası Spermatolojik Parametreler, Oksidatif Stres ve DNA Hasarı Üzerine. Kocatepe Veterinary Journal 12 3 363–369.
IEEE F. Avdatek, D. Yeni, M. K. Birdane, ve M. Gündoğan, “Sezon Dışı Pırlak Koç Sperma Sulandırıcısına İlave Edilen Lipoik Asid ve Trolox’un Dondurma ve Çözdürme Sonrası Spermatolojik Parametreler, Oksidatif Stres ve DNA Hasarı Üzerine”, kvj, c. 12, sy. 3, ss. 363–369, 2019, doi: 10.30607/kvj.592883.
ISNAD Avdatek, Fatih vd. “Sezon Dışı Pırlak Koç Sperma Sulandırıcısına İlave Edilen Lipoik Asid Ve Trolox’un Dondurma Ve Çözdürme Sonrası Spermatolojik Parametreler, Oksidatif Stres Ve DNA Hasarı Üzerine”. Kocatepe Veterinary Journal 12/3 (Eylül 2019), 363-369. https://doi.org/10.30607/kvj.592883.
JAMA Avdatek F, Yeni D, Birdane MK, Gündoğan M. Sezon Dışı Pırlak Koç Sperma Sulandırıcısına İlave Edilen Lipoik Asid ve Trolox’un Dondurma ve Çözdürme Sonrası Spermatolojik Parametreler, Oksidatif Stres ve DNA Hasarı Üzerine. kvj. 2019;12:363–369.
MLA Avdatek, Fatih vd. “Sezon Dışı Pırlak Koç Sperma Sulandırıcısına İlave Edilen Lipoik Asid Ve Trolox’un Dondurma Ve Çözdürme Sonrası Spermatolojik Parametreler, Oksidatif Stres Ve DNA Hasarı Üzerine”. Kocatepe Veterinary Journal, c. 12, sy. 3, 2019, ss. 363-9, doi:10.30607/kvj.592883.
Vancouver Avdatek F, Yeni D, Birdane MK, Gündoğan M. Sezon Dışı Pırlak Koç Sperma Sulandırıcısına İlave Edilen Lipoik Asid ve Trolox’un Dondurma ve Çözdürme Sonrası Spermatolojik Parametreler, Oksidatif Stres ve DNA Hasarı Üzerine. kvj. 2019;12(3):363-9.

13520    13521       13522   1352314104

14105         14106        14107       14108