İzmir Körfezi Kıyılarından Toplanan Makroalglerin Pigment Potansiyeli

Öz

Deniz yosunları yüksek miktarda protein, yağ asitleri ve mineral maddeler içermektedir. Makro alglerin biyokimyasal içerikleri tür, ışık, sıcaklık vb. koşullara bağlı olarak değişir. Tuzluluk ve sıcaklık koşullarına bağlı olarak Ege Denizi, makro algler bakımından yüksek tür çeşitliliğine sahiptir. Bu çalışmada Ege Denizi İzmir Körfezi kıyılarında seçilen istasyonlardaki su sıcaklığı en düşük 10,1 ⁰C, en yüksek 25,1 ⁰C, pH değerleri ise 7,8-8,1 aralığında ölçülmüştür. İzmir Körfez kıyılarında 12 adet makro alg türü; Yeşil Alglerden Ulva rigida, Ulva lactuca, Ulva compressa, Chaetomorpha linum, Kırmızı alglerden Gracilaria verrucosa, Gracilaria gracilis, Laurancia papillosa, Laurencia obtusa, Corallina officinalis ve Kahverengi alglerden Cystoseira barbata, Cystoseira crinita, Halopteris scoparia tespit edilmiştir. İzmir Körfezi kıyılarından toplanan makro alg türleri gölgede oda sıcaklığında (25 °C) kurutulup toz haline getirilerek analizler yapılıncaya kadar 20 °C'de karanlık ortamda muhafaza edilmiştir. Örneklerdeki pigmentler (klorofil-a ve toplam karotenoid) spektrofotometrik yöntem ile analiz edilmiştir. Toplam karoten miktarı en yüksek Chaetomorpha linum (Chlorophyta) türünde 0,532±0,01 mg/gr olarak tespit edilmiştir. En düşük toplam karoten miktarı ise Ulva lactuca’da 0,020±0,002 mg/gr ölçülmüştür. Klorofil- a miktarı en yüksek Chaetomorpha linum (Chlorophyta) türünde 0,319±0,008 mg/gr tespit edilirken, en düşük Gracilaria verricosa türünde 0,034±0,0003 mg/gr ve Laurencia obtusa türünde 0,035±0,004 mg/gr değeriyle ölçülmüştür. Makro alg türleri yüksek düzeyde pigment değerlerine sahiptir. Bu çalışmada elde ettiğimiz veriler doğrultusunda İzmir Körfezi’ndeki bazı makro alg türlerinin pigment kaynağının ekonomik değerleri ortaya çıkarılmıştır.

Anahtar Kelimeler

• Makro alg
• pigment
• İzmir Körfezi
• algal metabolitler

Kaynakça

1. Batista, A.P., Gouveia, L., Bvearra, N.M., Franco, J.M. & Raymundo, A., (2013). Comparison of microalgal biomas profiles as novel functiınal ingredient for food products. Algal Resource, 2: 164-173.
2. Boussiba, S., Bing, W., Yuan, J.P., Zarka, A., Chen, F., (1999). Changes in pigments profile in the green algae Haeamtococcus pluvialis exposed to environmental stresses, Biotechnol Lett., 21, 601–604.
3. Cardozo, K.H.M., Guaratini, T., Barros, M.P., Falcao, V.R., Tonon, A.P., Lopes, N.P., Campos, S., Torres, M.A., Souza, A.O., Copepicolo, P., Pinto, E., (2006). Metabolites from algae with economical impact, Comparative Biochemistry and Physiology, 146:60-78.
4. Dere, Ş., Dalkıran, N., Karacaoğlu, D., Yıldız, G., & Dere, E., (2003). The determination of total protein, total soluble carbonhydrate and pigment contents of some macroalgae collected from Gemlik-Karacaali (Bursa) and Erdek-Ormanlı (Balıkesir) in the Sea of Marmara, Turkey. Oceanologia, 45(3): 453-471.
5. Durmaz, Y., H.A., Duyar, Ş., Gökpınar, Y.Ö., Öğretmen ve N.M., Bandarra, (2008a). “Ulva spp. (Sinop, Karadeniz) Türünün Yağ Asitleri, Α-Tokoferol ve Toplam Pigment Miktarının Araştırılması” Journal of FisheriesScience.com, 2(3), 350-356.
6. Durmaz, Y., H.A., Duyar, Ş., Gökpınar, Y.Ö., Öğretmen ve N.M., Bandarra, (2008b). “Ulva spp. (Sinop, Karadeniz) Türünün Yağ Asitleri, Α-Tokoferol ve Toplam Pigment Miktarının Araştırılması” Journal of FisheriesScience.com, 2(3), 350-356.
7. Giordano, P., Scicchitano, P., Locorotondo, M., Mandurino, C., Ricci, G., Carbonara, S., Gesualdo, M., Zito, A., Dachille, A., Caputo, P., Riccardi, R., Frasso, G., Lassandro, A., Di Mauro and Ciccone, M.M., (2012). Carotenoids and Cardiovascular Risk Curr Pharm Des, 18: 5577-5589.
8. Gouveia L., Nobre B.P., Marcelo F.M., Mrejen S., Cardoso M.T., Palavra A.F., Mendes R.L., (2007). Functional food oil coloured by pigments extracted from microalgae with supercritical CO2. Food Chemistry 101 (2007) 717–723.

9. Gündoğan, N., Citak, S., Yücel, N., Devren, A., (2005). A note on the incidence and antibiotic resistance of Staphylococcus aureus I solated from meat and chicken samples. Meat Science 69(4):807-10.
10. Haryatfrehnia, R., Dewia, S.C., Meiliandaa, A., Rahmawatia, S., Saria, I.Z.R., (2015). Preliminary Study the Potency of Macroalgae in Yogyakarta: Extraction and Analysis of Algal Pigments from Common Gunungkidul Seaweeds. Procedia Chemistry 14: 373–380.
11. Hosikian, A., Lim, S., Halim, R. and Danquah, M.K., (2010). Chlorophyll Extraction from Microalgae: A Review on the Process Engineering Aspects. International Journal of Chemical Engineering, Article ID 391632, p:11.
12. Ito, K., & Hori, K. (1989). Seaweed: chemical composition and potential food uses. Food reviews international, 5(1), 101-144.
13. Kumari, V., Antonova, E., Fannon, D., Peters, E.R., Ffytche, D.H., Premkumar, P., (2010). Beyond dopamine: functional MRI predictors of responsiveness to cognitive behaviour therapy for psychosis. Front Behav Neurosci; 4:4
14. Limantara, L., P. Koehler, B. Wilhelm, R.J. Porra and H. Scheer. (2006). Photostability of Bacteriochlorophyll a and Derivatives: Potential Sensitizer for Photodinamic Tumor Theraphy. Photochemistry and Photobiology 82: 770-780.
15. Marin, N., Morales, F., Lodeiros, C., Tamigneaux, E., (1998). Effect of nitrate concentration on growth and pigment synthesis of Dunaliella salina cultivated under low illumination and preadapted to different salinities, J. Appl. Phycol., 10, 405–411.
16. Masojıdek, J., Torzillo, G., and Koblızek, M., (2013). Photosynthesis in Microalgae. Handbook of Microalgal Culture: Applied Phycology and Biotechnology, Second Edition. Edited by Amos Richmond and Qiang Hu. P:21-36.
17. Ortiz, J., Romero, N., Robert, P., Araya, J., Lopez-Hernandez, J., Bozzo, C., Navarrete, E., Osorio, A., Rios, A., (2006). Dietary fiber, amino acid, fatty acid and tocopherol contents of the edible seaweeds Ulva lactuca and Durvillaea antarctica. Food Chemistry 99 (1): 98–104.
18. Pinchetti, J.L.G., Fernández, E.C., Diez, P.M., Reina, G.G., (1998). Nitrogen availability influences the biochemical composition and photosynhesis of tank-cultivated Ulva rigida (Chlophyta), Journal of Applied Phycology, 10: 383-389.
19. Ramaraj, R., Tsai, D.D.W., Chen, P.H. (2013). Chlorophyll is not accurate measurement for algal biomass. Chiang Mai Journal of Science, 40, 547-555. Rameshkumar, S., Ramakritinan, C.M., Yokeshbabu, M. (2012). Proximate composition of some selected seaweeds from Palk bay and Gulf of Mannar, Tamilnadu, India. Asian Journal of Biomedical and Pharmaceutical Sciences 3(16), 1-5.
20. Sánchez M.D., Mantell, C., Rodríguez, M., Martínez de la Ossa, E., Lubián, L.M., Montero O., (2005). Supercritical fluid extraction of carotenoids and chlorophyll-a from Nannochloropsis gaditana, Journal of Food Engineering, 66: 245–251.
21. Topcuoğlu, S., Ergül, H. A., Baysal, A., Ölmez, E. and Kut, D., (2003). Determination of radionuclides and heavy metal concentrations in biota and sediment samples from Pazar and Rize stations in the eastern Black Sea. Fre. Environ.Bull. 12: 695-699.
22. Zou, N., Richmond, A., (2000). Light-path length and population density in photoacclimation of Nannochloropsis sp. (Eustigmatophyceae). Journal of Applied Phycology, volume 12, p: 349-354.
23. Zucchi, M.R., and Necchi Jr, O., (2001). Effects of temperature, irradiance and photoperiod on growth and pigment content in some freshwater red algae in culture. Phycological Research, volume 49, Issue 2, p: 103-114.