Tiyakloprid ve d-tubokurarin’in Rana ridibunda kas dokusu üzerine toksik etkilerinin elektrofizyolojik olarak değerlendirilmesi

Yıl 2016, Cilt: 9 Sayı: 2, 92 - 101, 10.08.2016

Yusuf Çamlıca , Esra Pekoğlu Ülkü Çömelekoğlu

Öz

Amaç: Bu çalışmada, neonikotinoid bir insektisit olan tiyakloprid ve antagonisti d-tubokurarin’in kurbağa gastrokinemius kası mekanik aktivite parametreleri üzerine etkilerinin doza ve uygulama süresine bağlı olarak araştırılması amaçlanmıştır. Yöntem: Çalışmada 1x10^-3, 1x10^-4, 1x10^-5 ve 1x10^-6 M derişimlerde tiyakloprid, 1x10^-5 M tiyakloprid + 1x10^-4 M d-tubokurarin kombinasyonu, 1x10^-6 M tiyakloprid + 1x10^-5 M d-tubokurarin kombinasyonu olmak üzere 6 deney grubu oluşturulmuştur. Tüm deney gruplarında agonist ve antagonistin etkileri eşit sayıda denek üzerinde çalışılmıştır (N=8). Ölçümler 0, 30, 60, 90 ve 120. dakikada alınmış ve 0. dakikada alınan ölçümler kontrol değeri olarak kabul edilmiştir. İskelet kası mekanik aktivitesini kayıtlamak için, BIOPAC MP 100 Acqusition sistemi kullanılmıştır ve bu kayıtlardan kasılma kuvveti, kasılma süresi ve gevşeme süresi ölçülmüştür. Bulgular: Elde edilen bulgularda, tiyakloprid kontrol gruplarına göre, kasılma kuvvetini %35-97, kasılma süresini %18-75, gevşeme süresini %33-71 oranlarında istatistiksel olarak anlamlı biçimde azaltmıştır (p<0.05). Benzer şekilde, tiyakloprid ve d-tubokurarin karışımı kontrol gruplarına göre, kasılma kuvvetini %57-94, kasılma süresini %23-59, gevşeme süresini ise %34-70 oranlarında anlamlı biçimde azaltmıştır (p<0.05). Sonuç: Tiyakloprid ve d-tubokurarin’in gastrokinemius kasının kasılma kuvvetini, kasılma ve gevşeme sürelerini anlamlı biçimde düşürmesi, bu insektisit ve antagonistinin çizgili kaslar üzerinde toksik etkisi olabileceğini düşündürmüştür.

Anahtar sözcükler: Tiyakloprid, d-tubokurarin, gastrokinemius, kasılma kuvveti

 

Anahtar Kelimeler

Tiyakloprid, d-tubokurarin, gastrokinemius, kasılma kuvveti

Kaynakça

• Vural N. Toksikoloji. Ankara, A.Ü. Basımevi, 1984:195.
• Stenersen J. Chemical Pesticides: Mode of Action and Toxicology, Florida, CRC Press, 2004:276.
• Ware GW, Whitacre DM. An Introduction to Insecticides. The Pesticide Book, 6th ed, Willoughby, Ohio, Meister Media Worldwide, 2004:488.
• Lu FC. Basic Toxicology. Washington, Taylor&Francis press, 1996:358.
• Tomizawa M, Casida JE. Selective toxicity of neonicotinoids attributable to specificity of ınsect and mammalian nicotinic receptors. Annual Review of Entomology 2003;48:339-64.
• Mullins JW. Imidacloprid: a new nitroguanidine insecticide. American Chemical Society Symposium Series 1993;524:183-198.
• Kagabu S, Medej S. Stability comparison of imidacloprid and related compounds under simulated sunlight, hydrolysis conditions and to oxygen. Bioscience, Biotecnology and Biochemistry 1995;59(6):980-985.
• Nauen R. Behaviour modifying effects of low systemic concentrations of imidacloprid on Myzus persicae with special reference to an antifeeding response. Pesticide Science 1995;44(2):145-153.
• Tomizawa W, Yamamoto I. Structure-activity relationships of nicotinoids and imidacloprid analogs. Journal of Pesticide Science 1993;18(1):91-98.
• Kocaman AY, Rencüzoğulları E, Topaktaş M. In vitro investigation of the genotoxic and cytotoxic effects of thiacloprid in cultured human peripheral blood lymphocytes. Enviromental Toxicology 2012;29(6):631-41.
• Şekeroğlu V, Şekeroğlu ZA, Demirhan E. Effects of commercial formulations of deltamethrin and/or thiacloprid on thyroid hormone levels in rat serum. Toxicology and Industrial Health 2014;30(1):40-6.
• Pimentel D, Greiner A, Bashore T. Economic and environmental costs of pesticide use. J. Rose (ed), Environmental Toxicology: Current Developments, Gordon and Breach Science Publisher, UK, 1998:121-187.
• Feng S, Kong Z, Wang X, Zhao L, Peng P. Acute toxicity and genotoxicity of two novel pesticides or amphibian Rana N. Hallowell. Chemosphere 2004;56:457-463.
• Shima T, Shiina T, Naitou K, Nakamori H, Sano Y, Shimizu Y. Does the capsaicin-sensitive local neural circuit constitutively regulate vagally evoked esophageal striated muscle contraction in rats?. Journal of Physiological Sciences 2015;66(2):105-11
• Thany SH. Agonist actions of clothianidin on synaptic and extrasynaptic nicotinic acetylcholine receptors expressed on cockroach sixth abdominal ganglion. NeuroToxicology 2009;30:1045–1052.
• Jonsson FM, Dabrowski M, Eriksson LI. Pharmacological characteristics of the inhibition of nondepolarizing neuromuscular blocking agents at human adult muscle nicotinic acetylcholine receptor. Anesthesiology 2009;110:1244-1252.
• Matsuda K, Buckingham SD, Kleier D, Rauh JJ, Grauso M, Sattelle DB. Neonicotinoids: ınsecticides acting on ınsect nicotinic acetylcholine receptors. Trends in Pharmacological Sciences 2001;22:573-580.
• Matsuda K, Shimomura M, Ihara M, Akamatsu M, Sattelle DB. Neonicotinoids show selective and diverse actions on their nicotinic receptor targets: Electrophysiology, molecular biology, and receptor modeling studies. Bioscience Biotechnology and Biochemistry 2005;69(8):1442-1452.
• Guyton AC, Hall JE. Tıbbi Fizyoloji. (Çev: Çavuşoğlu H, Yeğen BÇ.) Onbirinci Basım, Nobel Tıp Kitabevleri, Ankara 2007;87-9.
• Mullin CA, Frazier M, Frazier JL, Ashcraft S, Simonds R, vanEngelsdorp D. High levels of miticides and agrochemicals in North American apiaries: Implications for honey bee health. Plos One 2010;5(3):e9754.
• Vehovszky A, Farkas A, Ács A, Stoliar O, Székács A, Mörtl M, Györi J. Neonicotinoid insecticides inhibit cholinergic neurotransmission in a molluscan (Lymnaea stagnalis) nervous system. Aquatic Toxicology 2015;167: 172–179.
• Kumargal D, Çömelekoğlu Ü, Aşkın A. Nikotin ve Antagonisti Mecamylaminin Kurbağa (Rana ridibunda) İskelet Kası Üzerine Etkileri. Mersin Üniversitesi Sağlık Bilimleri Dergisi 2008;1(3):14-20.
• Söğüt F, Çömelekoğlu Ü. Piretroid İnsektisitlerin Kurbağa İskelet Kası Potasyum Kanalları Üzerine Etkisi. Mersin Üniversitesi Sağlık Bilimleri Dergisi 2013;6(2):9-15.