The Presence of Leptospirosis and Evaluation of Pathological Findings in The Cattle With Icterus Referred to Slaughterhouse

Öz

Leptospirosis is a bacterial infection with an important zoonotic character in terms of animal husbandry, causing abortion, infertility, and milk yield losses. Leptospirosis progresses in acute septicemic or chronic nephritic forms. In leptospirosis, the organs are coloured yellow due to icterus. The liver is anaemic, soft, and large. There is bleeding in the serosa. It is observed that the kidneys are slightly swollen and light brown, and there are blackish-brown small foci on the cross-sectional faces of the kidneys. There is intrahepatic cholestasis. In this study, 11 cattle with pathological icterus were examined in terms of leptospirosis among 35 cattle with icterus slaughtered in 2020 in the municipal slaughterhouse of Şarkikaraağaç district of Isparta province. Liver and kidney samples taken from these cases were processed with known laboratory methods and stained with immunperoxidase and levadite staining methods. The results obtained were compared with the histopathological findings.It was seen that internal organs, serosa and mucous membranes and carcass were stained yellow in cattle with leptospirosis. It was determined that the livers were anemic, soft and enlarged. It was seen that kidneys were to be slightly swollen and light brown. While positivity was detected in 7 cases with the Levadite staining method, 11 cases with immunohistochemical diagnosis method. The results obtained in this study revealed that the application of immunohistochemical diagnosis in the specific and early diagnosis of leptospirosis gave etiologically compatible and more reliable results compared to my Levaditi method.

Anahtar Kelimeler

• Icterus
• Immunohistochemistry
• Leptospirosis
• Levaditi
• Cattle

Mezbahada Kesime Sevk Edilen İkteruslu Sığırlarda Leptospirozun Varlığı ve Patolojik Bulguların Değerlendirilmesi

Öz

Leptospiroz, hayvan yetiştiriciliği açısından önemli zoonoz karakterli, abort, kısırlık ve süt verimi kayıplarına neden olan, bakteriyel bir enfeksiyondur. Leptospiroz akut septisemik veya kronik nefritik formlarda seyreder. Leptospirozlu hayvanlarda makroskobik olarak ikterusa bağlı organlar sarı renge boyanır. Karaciğer anemik, yumuşak ve büyüktür. Serozalarda kanamalar vardır. Böbrekler hafif şişkin ve açık kahve renkte olup kesit yüzlerinde siyahımtırak-kahve renkte küçük odakların bulunduğu gözlenir. Mikroskopik olarak, karaciğer parankiminde dejeneratif ve nekrotik değişiklikler ile portal alanda yangısal hücre infiltrasyonları görülür.Remark hücre dizilerinde bozulmalar ve intrahepatik kolestaz gözlenir. Böbrekte tubul epitelllerinde dejenaratif ve nekrotik değişiklikler, tubul lümenlerinde hiyalin silindirler gözlenir. Ayrıca böbrek intersitisyumunda yoğun yangısel hücre infiltrasyonları görülür. Bu çalışmada Isparta ili Şarkikaraağaç ilçesi belediye mezbahasında 2020 yılında kesilen ve ikterus görülen 35 sığırdan, patolojik ikterus gözlenen 11’i leptospirozis yönünden incelendi. Bu olgulardan alınan karaciğer ve böbrek örnekleri bilinen laboratuvar yöntemleri ile işlenerek immunperoksidaz ve levaditi boyama yöntemleri ile boyandı. Elde edilen sonuçların histopatolojik bulgular ile karşılaştırması yapıldı. Leptospirozisli ineklerde iç organların, seroza ve mukozalar ile karkasın sarı renge boyanmış olduğu görüldü. Karaciğerlerin sarımsı renkli, yumuşak kıvamlı ve büyümüş olduğu belirlendi. Böbreklerin hafif şişkin ve açık kahverenginde olduğu gözlendi. Levaditi boyama metoduyla 7 olguda pozitiflik tespit edilirken, immunhistokimyasal boyama yöntemiyle 11 olguda pozitiflik tespit edildi. Bu çalışmada elde edilen sonuçlar leptospirozun spesifik ve erken tanısında immunhistokimyasal tanı uygulamasının Levaditi metoduna göre etiyolojik açıdan uyumlu ve daha güvenilir sonuçlar verdiğini ortaya koymaktadır.

Anahtar Kelimeler

• İkterus
• İmmunhistokimya
• Leptospiroz
• Levaditi
• Sığır

Kaynakça

1. Akçay S, Pamukçu A 1950. Leptospirosis in cattle in Turkey. Turk Veteriner Hekimleri Dernegi Dergisi, 20, 319-32.
2. Arda M, Aydın N, Ilgaz A, Minbay A, Kahraman M, İzgür M, Leloğlu N, Akay Ö, Diker KS 1997. Spiroketler. In: Özel Mikrobiyoloji, Ed. Arda M, Medisan, Ankara, s.257-274.
3. Arslan, Z 2019. Marmara Bölgesinde Ruminantlardaki Abort Olgularında Leptospirozisin Levaditi ve İmmunohistokimyasal Yöntemlerle Teşhisi ve Histopatolojik Bulgularla Karşılaştırılması. SÜ Sağ. Bil. Ens. Yüksek Lisans Tezi, Konya.
4. Bolin CA 2005. Leptospirosis in cattle: Disease review and update. Proceeding of the NAVC North American Veterinary Conference, Orlando, Florida, 8-12.
5. Ellis TM, Robetrson GM, Hustas L, Kırby M 1983. Detection of leptospires In tıssue using an immunoperoxidase staining procedure. Aust. Vet J, 12, 364-367. DOI:10.1111/j.1751- 0813.1983.tb02849.x
6. Erer H., Kıran MM., Çiftçi MK 2009. Veteriner Genel Patoloji, 3. Baskı. Bahçıvanlar Basım Sanayi A.Ş. Konya.
7. Falini B, Taylor CR 1983. New developments in immunoperoxidase techniques and their application. Arch Pathol Lab Med, 107, 105-17.
8. Flannery B, Costa D, Carvalho FP, Guerreiro H, Matsunaga J, Da Silva ED, Ferreira AG, Riley LW, Reis MG, Haake DA, Ko AI 2001. Evaluation of recombinant Leptospira antigen-based enzyme-linked immunosorbent assays for the serodiagnosis of leptospirosis. J Clinic Microbiol, 39, 9, 3303-10. DOI:10.1128/JCM.39.9.3303-3310.2001

9. Hamond C, Martins G, Diniz R, Penna B, Lilenbaum W 2012. Comparison of rapid-slide versus microscopic agglutination testsfor equine leptospirosis. Onl J Vet Res, 16, 111-16.
10. Hathaway S, Little T, Pritchard D 1986. Problems associated with the serological diagnosis of Leptospira interrogans serovar hardjo infection in bovine populations. The Veterinary Record, 119, 4, 84-6. DOI:10.1136/vr.119.4.84
11. Hazıroğlu R, Milli ÜH 2001. Veteriner Patoloji, Cilt II, Ed:Hazıroğlu R, Milli ÜH, Tamer Matbaacılık, Ankara, s.433-538.
12. Jones TC, Hunt RD, King NW 1997. Veterinary Pathology. 6th Edition, Lippincott Wilkins, p:467-469.
13. Kaufmann AF, Weyant RS 1995. Leptospiraceae. In: Manual of Clinical Microbiology. Eds: Murray, PR, Baron EJ, Pfaller MA, Tenover FC, Yolken RH, 6th ed, ASM Press, Washington DC, p. 621-25.
14. Levett PN 2001. Leptospirosis. Clinic Microbiol Rev. 14, 2, 296-326.
15. Lilenbaum W, Varges R, Brandão FZ, Cortez A, de Souza SO, Brandão PE, Richtzenhain LJ, Vasconcellos SA 2008. Detection of Leptospira spp. in semen and vaginal fluids of goats and sheep by polymerase chain reaction. Theriogenology, 15,69, 837-42. DOI: 10.1016/j.theriogenology.2007.10.027
16. Lucheis SB, Ferreira RS 2011. Ovine Leptospirosis in Brazil. J of Venom Anim and Tox Includ Trop Dis. 17, 4, 394-405.DOI: 10.1590/S1678-91992011000400006
17. Luna LG 1968. Manual of histologic staining methods of the Armed Forces Institute of Pathology. 3rd Edition, McGraw-Hill, New York. p.32-39.
18. Miller DA, Wilson MA, Beran GW 1991. Survay to estimate prevalance of Leptospira interrogans infection in mature cattle in the United States. Am J Vet Res, 52, 1761-65.
19. OIE, Terrestrial Manuel 2018. Leptospirosis. Erişim Tarihi, 2018, Erişim Adresi, http://www.oie.int/fileadmin/Home/eng/Health_standards/tahm/3.01.12_Lepto.pdf.
20. Özdemir Ö, Erer H 2018. Dişi Genital Sistem, In: Veteriner Sistemik Patoloji, II. Cilt, Eds: Erer H, Çiftçi MK, 3.Baskı, Konya, Güler Ofset, p.199-242.
21. Özkan Ö, Dörterler R, Hoştürk F 1993. Erzurum ili ve yöresindeki sığır ve koyunlarda sarılık ve kan işeme semptomlarıyla seyreden hastalıklarda Clostridium eodemetiens, Leptospira ve kan protozoonlarının insidansının belirlenmesi. Etlik Vet Mikrobiol Derg, 7, 4, 97-104.
22. Picardeau M 2013. Diagnosis and Epidemiology of leptospirosis. Méd et Malad Infect, 43, 1, p. 1-9.DOI: 10.1016/j.medmal.2012.11.005
23. Quinn PJ, Carter M, Markey BK, Garter GR, 1993. "Clinical Veterinary Microbiology". WoHe PlbIishing, London, England.
24. Russell CJ, Faine S 1984. Leptospira. In: Bergeys Manual of Systematic Bacteriology. Vol. I, Ed. Krierg, R.,Hold, J.G.,Williams& Wilkins, London, p.62-7.DOI: 10.1016/j.smallrumres.2007.04.006
25. Sağlam YS, Yener Z, Temur A, Yalcin E 2008. Immunohistochemical detection of leptospiral antigens in cases of naturally occurring abortions in sheep. Small Rum Res, 74, 1, 119-22.
26. Scanziani E, Luini M, Fabbi M, Pizzocaro P 1991. Comparison between specific immunoperoxidase staining and bacteriological culture in the diagnostic of renal leptospirosis of pigs. Res Vet Sci, 50, 229-32.DOI:10.1016/0034-5288(91)90112-2
27. Scott P 2018. Leptospirosis in Cattle. National Animal Disease Information Service. Erişim tarihi, 2018.
28. Szeredi L, Haake DA 2006. Immunohistochemical identification and pathologic findings in natural cases of equine abortion caused by Leptospiral infection. Vet Pathol, 43, 5, 755-61. DOI:10.1354/vp.43-5-755
29. Thompsoon JC, Manktelow BW 1989. PathogeneSIS of renal lesions in haemeglobinaemic and nonhaemeglobinaemic leplospirosis. J Comp Path, 101, 2, 201-214. DOI:10.1016/0021- 9975(89)90066-2
30. Yener Z, Keleş İ 2001. Sığırlarda Leptospirosis Üzerinde Klinik ve Patolojik İncelemeler, Vet Bil Derg, 17, 1, 21-26.
31. Yıldırım, Y 1996. Et Endüstrisi (4.ed.), Remzi Ofset, Ankara.