Hindi (Meleagris gallopavo, Linnaeus, 1758) Konjunktiva Mast Hücrelerinin Lokalizasyonları ve Histokimyasal Özellikleri

Yıl 2018, Cilt: 29 Sayı: 1, 1 - 5, 30.04.2018

Kenan Çınar , Funda Pekmezci Mustafa Öztop

Öz

Bu çalışmada hindi (Meleagris gallopavo) konjunktivasının tüm bölgelerinde (marginal, tarsal, orbital, forniks
ve bulbar) bulunan mast hücrelerinin farklı fiksatiflerin uygulanması ile alt tiplerinin (bağ dokusu ve mukozal
mastositler) ve bölgesel dağılımlarının belirlenmesi amaçlandı. Çalışmada 6 adet erişkin hindiden temin
edilen konjunktiva dokuları Carnoy, %10 formalin, Mota’nın kurşun asetat (BLA) fiksatiflerinde ayrı ayrı fikse
edildi. Mast hücrelerinin şeklini ve granüllerini en iyi tespit eden fiksatifin BLA olduğu belirlendi. BLA ve
Carnoy solüsyonlarında mast hücrelerinin metakromazi özelliklerinin daha iyi gözlendiği tespit edildi. %10
formaldehit tespit solüsyonunda Toluidine Blue (TB) boyamasında mast hücrelerinin tamamının mavi renkte
boyandığı ancak metakromazi özelliğinin çok zayıf olduğu saptandı. Alcian Blue-Safranin O uygulaması
sonucunda safranin (+) ve karışım halinde Alcian Blue-Safranin O (+) mast hücrelerinin çok nadir olduğu
tespit edildi. Konjunktiva bölgelerinde bu kombine boyama sonucunda Alcian Blue (+) mast hücre sayısının
fazla olduğu yani mast hücrelerinin büyük bir kısmının mukozal mast hücresi karakterinde olduğu belirlendi.
Carnoy ve %10’luk formalin fiksatiflerinde tek başına safranin pozitif mast hücresine rastlanmadı. Mast
hücrelerinin genel dağılımlarının belirlenmesi amacıyla uygulanan TB ve Thionin boyama sonucunda mast
hücre sayısının en fazla olduğu bölgenin palpebral konjunktiva olduğu bunu sırasıyla forniks ve bulbar
konjunktivanın izlediği belirlendi. Berberin sülfat uygulaması ile mast hücrelerinde zayıf sarı-yeşil floresan
oluştuğu tespit edildi. Bölgeler arasında bir farka rastlanmadı. Sonuç olarak hindi mast hücrelerinin bölgesel
dağılımları açısından farklılık gösterdikleri ve boyanma özelliklerine göre ise heterojen karaktere sahip
oldukları belirlendi.

Anahtar Kelimeler

Hindi, Göz, Konjunktiva, Mast Hücreleri, Histokimya, Meleagris gallopavo

Localization and Histochemical Features of Conjunctiva Mast Cells In Turkey (Meleagris gallopavo, Linnaeus, 1758)

Öz

In
this study, it was aimed to determine subtypes (connective tissue and mucosal
mastocytes) and distributions of mast cells in all regions (marginal, tarsal,
orbital, fornix and bulbar) of turkey (Meleagris gallopavo) conjunctiva by the
implementation of the different fixatives. The conjunctiva tissues taken from 6
adult turkey were fixed in Carnoy, 10% formalin and Mota’s lead acetate
(BLA) solutions. BLA was the best among fixatives used in this study for shape
and granules of mast cells. It was established that metachromatic dye-staining
characteristics of mast cells was observed better with BLA and Carnoy
solutions. By the 10% formalin fixative and Toluidine Blue (TB) staining, all
of the mast cells stained blue but the metachromasia was very weak. As a result
of Alcian Blue-Safranin O application, it was detected that the safranin (+)
and the mixed Alcian Blue-Safranin O (+) mast cells were very rare. In the same
combined staining, it was also determined that the number of Alcian Blue (+)
mast cells was excessive, so a large number of mast cells was property of
mucosal mast cell in the conjunctival regions. Only Safranin positive mast cell
was not found in the Carnoy and 10% formalin fixatives. As a result of statistical
evaluation of data with the TB and Thionin staining methods applied to
determine the general distributions of mast cells, it was detected that the
palpebral conjunctiva was the region with the highest number of mast cell, and
fornix and bulbar conjunctiva followed by it, respectively. Mast cells gave
weak yellow-green fluorescence through the Berberine sulfate application. There
was no difference among the regions. In conclusion, it was determined that
turkey conjunctival mast cells showed heterogeneous differences according to
the staining properties.

Anahtar Kelimeler

Turkey, Eye, Conjunctiva, Mast Cells, Histochemistry, Meleagris gallopavo

Kaynakça

• Akgöz D (2006). Köpeklerin konjunktivasında bulunan mast hücrelerinin histokimyasal, enzim histokimyasal ve immunohistokimyasal özellikleri. Erciyes Üniv Sağ Bil Ens, Yüksek lisans tezi. 68s. Kayseri. Aştı RN, Kurtdede A, Kurtdede N, Ergün E, Güzel M (2005). Mast cells in the dog skin: distribution, density, heterogeneity and influence of fixation techniques. Ankara Üniv Vet Fak Derg, 52, 7-12. Bancroft JD, Steven A, Turner DR (2013). Theory and Practice of Histological Techniques. Churchill Livingstone, 7th ed. New York. Chen Z, Irani AA, Bradford TR, Craig SS, Newlands G, Miller H, Huff T, Simmons H, Schwartz LB (1993). Localization of rat tryptase to a subset of the connective tissue type of mast cell. J Histochem Cytochem, 41(7), 961-969. Cook HC (1961). A modified thionin technique for mast cells in tissue sections. J Med Lab Technol, 18, 188-189. Csaba G (1969). Mechanism of the formation of mast-cell granules. II. Cell-free model. Acta Biol Acad Sci Hung, 20(2), 205-210. Demirbağ E, Çınar K, Kutlar MH, Eroğlu G, Sarı SM (2012). Ratların (Rattus rattus) ince bağırsaklarında mast hücre dağılımı ve heterojenitesi. SDÜ Fen Derg, 7(2), 92-99. Eren Ü (2000). Köpek derisinde mast hücreleri. Ankara Üniv Vet Fak Derg, 47, 167-175. Erpek S, Otlu A (1995). Tavşan ağız mukozasında mast hücrelerinin dağılımı. Turgut Özal Tıp Merk Derg, 2 (3), 258-267. Harem MK, Liman N, Alan E (2011). Distribution, density and histochemical profiles of the lung mast cells during the post-hatching period of Japanese quails (Coturnix coturnix japonica). Res Vet Sci , 90, 1–8. İrkeç M, Bozkurt B (2008). Konjunktiva İmmunolojisi. Turkiye Klinikleri J Ophthalmol, 1 (3), 66-71. Karaca T, Yörük M (2004). A morphological and histometrical study on distribution and heterogeneity of mast cells of chicken’s and quail’s digestive tract. Van Vet J, 15(1-2), 115-121. Kube P, Audige L, Künther K, Welle M (1998). Distribution, density and heterogeneity of canine mast cells and influence of fixation techniques. Histochem Cell Biol, 110(2), 129-135. Kurtdede N, Yörük M (1995). Tavuk ve bıldırcın derisinde mast hücrelerinin morfolojik ve histometrik incelenmesi. Ankara Üniv Vet Fak Derg, 42, 77-83. Leonardi A (2002). The central role of conjunctival mast cells in the pathogenesis of ocular alergy. Curr Allergy Asthma Rep, 2, 325-331. McMenamin PG, Morrison SM, McMenamin C (1996). Immunomorphologic studies of mast cell heterogeneity, location and distributon in the rat conjunctiva. J Allergy Clin Immunol, 97 (6), 1375-86. Morgan SJ, Williams JH, Walls AF, Church MK, Holgate ST, McGill JI (1991). Mast cell numbers and staining characteristics in the normal and allergic human conjunctiva. J Allergy Clin Immunol, 87 (1), 111-6. Nichols BA (1996). Conjunctiva. Microsc Res Tech, 33, 296-319. Noviana D, Mamba K, Makimura S, Horii Y (2001a). Distribution histochemical and enzyme histochemical characterization of mast cells in dogs. J Mol Histol, 35(2), 123–132. Noviana D, Kono F, Nagakui Y, Shimizu H, Mamba K, Makimura S, Horii Y (2001b). Distribution and enzyme histochemical characterisation of mast cells in cats. Histochem J, 33 (11-12), 597-603. Özçetin H (Ed) (1989). Parson’s Göz Hastalıkları. Atlas Tıp Kitapçılık Yayınları, 436s, Ankara. Pehlivan KD (2005). Bimatoprost, travoprost, lavanoprost’un gözyaşı işlevi ve göz yüzeyi üzerine etkilerinin karşılaştırılması. T.C. Sağlık Bakanlığı Haydarpaşa Numune Eğitim ve Araştırma Hastanesi 1.Göz Kliniği Uzmanlık Tezi. 40 s. İstanbul. Strobel S, Miller H, Fergıson A (1981). Human intestinal mucosal mast cells: evaluation of fixation and staining techniques. J Clin Pathol, 34(8), 851-858. Uslu S, Yörük M (2008). Hindilerde sindirim sisteminde mast hücrelerinin dağılımı ve heterojenitesi üzerine morfolojik ve histometrik araştırmalar. Van Vet J, 19(2), 47-51. Uslu S, Yörük M (2013). Yerli Ördek (Anas platyrhynchase) ve Kaz’ın (Anser anser) alt solunum yolları ve akciğerlerinde bulunan mast hücrelerinin dağılımı ve heterojenitesi üzerine morfolojik ve histometrik araştırmalar. Kafkas Üni Vet Fak Derg, 19(3), 475-482. Wang T (1991). Mast cells in the chick digestive tract. II. Fixation, distribution, histochemistry and ultrastructure. Tokai J Exp Clin Med, 16(1), 27-32. Wolman M (1970) On the use of the polarised light in pathology. Pathol Annu, 5, 381-416. Yao L, Baltatzis S, Zafirakis P, Charalampos LR, Voudouri A, Markomichelakis N, Zhao T, Foster CS (2003). Human mast cell subtypes in conjunctiva of patients with atopic keratoconjunctivitis, ocular cicatricial pemphigoid and Stevens-Johnson Syndrome. Ocul Immunol Inflamm, 11(3), 211-222.