Bacterial Pathogens in Cultured Red Progy (Pagrus pagrus) and Common Seabream (Pagrus major)

Yıl 2018, Cilt: 34 Sayı: 1, 14 - 21, 30.04.2018

Tülay Akaylı , Remziye Eda Yardımcı

Öz

This
study was carried out with the aim of detecting the bacterial pathogens causing
the disease in the redporgy (Pagrus
pagrus) and common seabream (Pagrus
major) fishes cultivated in the cage farm in our country. 8 moribound redporgy
and 5 red seabream weighing 100-250 gr were investigated in the sampling between
2009 and 2010. After the clinical examination of indivudials, necropsy were performed
and bacteriological cultures were stread into different media from viceral
organs (liver, spleen and kidney) and afected tissue sampels from moribound
fish were collected inside 10% buffered formaline solusion to seacrh
bacterial pathogens effects. Externally pigmentation problem and swelling in the abdomen were determinated in
moriboud fish while lubrication of internal organs, liver hemorrhage and
shrinkage internally. As a result of bacteriological investigation, Photobacterium damselae subsp. damselae was only isolated and
identifield from moribound redporgy, while from P. damselae subsp. damselae
were isolated and identifield with other pathogen bacteria Vibrio alginolyticus, Stapylococcus
aeureus and Microcooccus sp. from
moribound red seabream. Histopathologically, vakuoler degeneration and
liquefactive necrosis in the parenchyma cells ofliver, tubular necrosis and
multifocal melanocyte macrophage foci in the kidneys, melting in muscle and
gill filaments, necrosis in the intestinal mucosa and the intestinal epithelium
sloughte into lumen, hemosiderin
deposits as well as spleen emptying were determinated. As a result, P. damselae
subsp. damselae as a primary pathogen
for these two fish species caused acute Photobacteriosis were firstly
determineted in this study.

Anahtar Kelimeler

Red Porgy, Pagrus pagrus, Common Seabream, Pagrus major, Cage culture, Bacterial Diesases Problems

Yetiştiriciliği Yapılan Kırma (Pagrus pagrus) ve Fangri (Pagrus major) Mercan Balıklarında Görülen Bakteriyel Patojenler

Öz

Bu çalışma ile yurdumuzdaki kafes işletmelerinde yetiştiriciliği yapılan kırma mercan (Pagrus pagrus)
ve fangri mercan (Pagrus major) balıklarında hastalığa neden olan bakteriyel patojenlerin tespit
edilmesi amacıyla yürütülmüştür. 2009 ve 2010 yılları arasında gerçekleştirilen
örnekleme çalışmalarında ağırlıkları 100-250 gr arasında değişen 8 adet
hasta kırma mercan ve 5 adet hasta fangri mercan
balığı incelenmiştir. İncelenen balıklarının klinik muayenesi yapıldıktan sonra
otopsi işlemi gerçekleştirilmiş, iç organlarından (karaciğer, dalak ve böbrek)
farklı besi yerlerine bakteriyolojik ekimler ve patojen bakterilerin hasta
balıkların dokularında yaptıkları etkilerin araştırılması için %10 tamponlu
formalin solüsyonu içine doku örnekleri alınmıştır. Hasta balıklarda dış
bakıda pigmentasyon problemi ve karında şişkinlik gözlenirken, iç bakıda ise iç organlarda yağlanma, karaciğerde hemoraji ve
küçülme tespit edilmiştir. Bakteriyolojik ekimler sonucunda kırma mercan balıklarının iç organlarından
sadece Photobacterium damselae subsp.
damselae izole edilirken, fangri mercan
balıklarından ise karma enfeksiyona neden olan  P.
damselae subsp. damselae, Vibrio
alginolyticus, Stapylococcus aeureus ve
Microcooccus sp. gibi patojen bakteriler ile birlikte izole ve identifiye
edilmiştir. Histopatolojik olarak hasta
balıkların karaciğerinde parankim hücrelerinde vakuloler dejenerasyon ve liquefactive
nekroz, böbreklerde tübüler nekroz ve multifokal melano makrofaj odakları,  kas dokusunda ve solungaç filementlerinde
erime, bağırsak mukozasında nekroz ve bağırsak epitelinin lümene döküldüğü, dalakta
boşalma yanı sıra hemosiderin depozitleri tespit edilmiştir. Sonuç olarak, bu
çalışmada P. damselae subsp. damselae’nın  bu iki balık türü için primer patojen oduğu ve
akut Photobacteriosis’e neden olduğu ilk kez tespit edilmiştir.

Anahtar Kelimeler

Kırma mercan, Pagrus pagrus, Fangri mercan, Pagrus major, Kafes yetiştiricliği, Bakteriyel Hastalık Problemleri

Kaynakça

• Fostier A, Kokokiris L, Le Menn F, Mourot B, Pavdilis M, Divanach P, Kentouri M, 2000. Recent advances in reproductional aspects of Pagrus pagrus, CIHEAM-Cahiers Options Mediterraneennes, 47: 181-192.2.
• Özden O, Büke E, Fırat K, Saka Ş, 2005. Fangri Balığı (Pagrus pagrus) Yetiştiriciliği, Tarım ve Köyişleri Bakanlığı Tarımsal Üretim ve Geliştirme Genel Müdürlüğü, Ankara, 209-210.3.
• TÜİK, 2016. Su Ürünleri İstatistikleri. www.tuik.gov.tr/PreTablo.do?alt_id=1005.
• Masamura K, Wakabayashi H, 1977. An outbreak of gliding bacterial disease in hatchery-born seabream (Pagrus major) and gilthead (Acanthopagrus schlegeli) fry in Hiroshima, Fish Pathol., 12:171-177.
• Hikida M, Wakabayashi H, Egusa S, Masamura K, 1979. Flexibacter sp., a gliding bacterium pathogenic to some marine fishes in Japan. Bull. Jpn Soc. Sci. Fish.; 45, 421–428.
• Iwata K, Tanohara Y, Ishibashi O, 1978. Studies on factors related to mortality of young red seabream (Pagrus major)in the artificial seed production, Fish Pathol.,13, 97-102.
• Yasunaga N, Ogawa S, Hatai K, 1982. Characteristics of the pathogen Edwardsiella isolated from several species of cultured marine fishes, Bull. Nagasaki Pref. Inst. Fish., 8, 57-65.
• Muroga K, Tatani M, 1982. Isolation of Vibrio anguillarum from juvenile red seabream (Pagrus major), Fish Pathol., 16, 211-214.
• Syasina I, Park IS, Kim JM., 2004. Epitheliocystis disease in red sea bream Pagrus major and induced hybrid, red sea bream Pagrus major (?) × black sea bream Acanthopagrus schlegeli (?), cultured in Korea, Bull. Eur. Ass. Fish Pathol., 24(5), 260-267.
• El Aamri F, Padilla D, Acosta F, Caballero MJ, Roo J, Bravo J, Vivas J, Real F, 2010. First report of Streptococcus iniae in red porgy (Pagrus pagrus, L.). Journal of Fish Diseases, 33, 901–905.
• Candan AA, 1993. Çipura (Sparua aurata L. 1758) Balıklarında Vibrio anguillarum İnfeksiyonu. Türk Mikrobiyoloji Cemiyeti Dergisi, 23, 25-27.
• Akaylı T, Timur G, 2002.Vibriosis in gilthead sea bream in farms in the Aegean Sea coast of Turkey, Turkey J Fish Aqua Sci 2002; 2: 89-91.
• Akaylı T, 2001. Kültür Çipura Balıklarında (Sparus aurata, L 1758) Vibriosis’in ELISA ve Bakteriyolojik Yöntemlerle Teşhisi, T.C. İstanbul Üniversitesi Fen Bilimleri Enstitüsü, Doktora Tezi.
• Çağırgan H, Yüreklitürk O, 1996. Kültürü yapılan çipura (Sparus aurata) ve levrek (Dicentrarchus labrax) balıklarında görülen bakteriyel hastalıkların teşhis ve tedavisi üzerine bir arastırma, Bornova Vet. Kontr. Ve Arast. Enst. Md. Derg., 21: 113-122.
• Çağırgan H, 1993. The first isolation Pasteurella piscicida from cultured Sea bream, Hay. Arastirma Dergisi, 3, 82-83.
• Timur G, Timur M, Karatas S, Akaylı T, 1999. Ichthyophonus hoferi ile enfekte olmuş kültür levreklerinde (Dicentrarchus labrax) görülen pasteurellosis hastalığı üzerinde bir çalışma, TJAS, Special Issue, 246, 37-61.
• Candan A, Küçüker-Anğ M, Karatas S, 1996. Pasteurellosis in cultured sea bass (Dicentrarchus labrax) in Turkey, Bull. Eur. Ass. Fish Pathol., 16(5), 195-196.Korun J, Timur G, 2005.The first pasteurellosis case in cultured sea bass (Dicentrarchus labrax, L.) at low marine water temperature in Turkey, Israeli J.Aquacult.-Bamidgeh, 57(3), 198-207.
• Korun J, Timur G, 2005.The first pasteurellosis case in cultured sea bass (Dicentrarchus labrax, L.) at low marine water temperature in Turkey, Israeli J.Aquacult.-Bamidgeh, 57(3), 198-207.
• Korun J., Gökoğlu M. 2006. First isolation of Vibrio vulnificus from cultured common sea bream (Pagrus pagrus) in Turkey. J. Anim. Vet. Adv., 6(6): 823-827.
• Buller NB, 2004. Bacteria from Fish and Other Aquatic Animals:A Practical İdentification Manuel, CABI Publishing,Cambridge USA, ISBN 0851997384.
• Austin B, Austin D, 2007. Bacterial Fish Pathogens Disease of Farmed And Wild Fish, 7th (revised) Edition, Springer-Praxis Publishing, Chichester.
• Noga EJ, 2000. Fish Disease: Diagnosis and Treatment, Iowa State University Press, Iowa, 99-058466.Bullock AM, 1978. Laboratory Methods in Fish Pathology, Ed. by Roberts R.J., Bailliere Tindall, London, 235-267.
• Bullock AM, 1978. Laboratory Methods in Fish Pathology, Ed. by Roberts R.J., Bailliere Tindall, London, 235-267.
• Drury RAB, Wallington EA, 1980. Carleton’s Histological Technigue, Fifth edition, Oxford University Press, ISBN 0-19-261310-3.
• Culling CFA, 1963. Handbook of Histopathological Techniques, second edition, Butterworth&Co.(Published) Com.
• Fouz, B., J. L. Larsen, B. Nielsen, J. L. Barja, and A. E. Toranzo. 1992. Characterization of Vibrio damsela strains isolated from turbot Scophthalmus maximus in Spain. Dis. Aquat. Org. 12:155–156.
• Fujioka, R. S., S. B. Greco, M. B. Cates, and J. P. Schroeder. 1988. Vibrio damsela from wounds in bottlenose dolphins Tursiops truncatus. Dis. Aquat. Org. 4:1–8.
• Pedersen, K., I. Dalsgaard, and J. L. Larsen. 1997. Vibrio damsela associated with diseased fish in Denmark. Appl. Environ. Microbiol. 63:3711–3715.
• Magariños B, Toranzo AE, Romalde JL, 1996. Phenotypic and pathobiological characteristics of Pasteurella piscicida, Annu. Rev. Fish Dis. 6:41–64.