Yüzeyde Zenginleştirilmiş Raman Saçılması (YZRS) ile Ovaryum Kanser İlaç Direncinin İncelenmesi

Yıl 2021, Cilt: 37 Sayı: 3, 404 - 411, 30.12.2021

Omer Aydin

Öz

Yumurtalık kanseri kadınlar arasında yaygın olarak görünen en ölümcül kanserlerdendir. Ovaryum kanserinde sisplatin antikanser ilacı yaygın olarak kullanılmaktadır. Fakat zamanla hücrelerde sisplatine karşı direnç oluşmaktadır. Gelişen bu ilaç direnci tedaviyi olumsuz etkilemektedir. İlaç direncini erken safhada hızlı bir şekilde tespit edilmesi ovaryum kanserinin hem tedavisini hem de sağ kalım oranlarını olumlu etki oluşturacağı açıktır. Bu çalışmada, sisplatin ilacına karşı gelişen direnci A2780 sisplatin dirençli ovaryum kanser hücreleri (A2780cis) ile sisplatine duyarlı A2780 hücre hatları yüzeyde-zenginleştirilmiş Raman Spektroskopisi tekniği (YZRS) ile incelenmiş ve temel bileşen analizi ile de analiz edilmiştir. İki hücre hattının YZRS spektrumları göz ile ilaç direncini ayırt etmede zorlanılırken temel bileşen analizi sonucu %84 doğruluk ile sisplatine direnç kazanmış hücreler duyarlı hücrelerden ayırt edilmiştir. Bu yöntemin daha da geliştirilerek ileride klinik düzeyde analizlerde kullanılabilme potansiyeli mevcuttur.

Anahtar Kelimeler

Yüzeyde Zenginleştirilmiş Raman Saçılması (YZRS), Ovaryum Kanseri, Sisplatin, İlaç direnci, Altın nanoparçacık, Temel Bileşen Analizi

Kaynakça

• [1] Dasari, S., Tchounwou, P. B. 2014. Cisplatin in cancer therapy: molecular mechanisms of action. Eur J Pharmacol, 5;740:364-78.
• [2] Galluzzi, L., Senovilla, L., Vitale, I., Michels, J., Martins, I., Kepp, O., Castedo, M., Kroemer, G. 2012. Molecular mechanisms of cisplatin resistance. Oncogene, 31(15):1869-83.
• [3] Anonim, 2018. Türkiye Kanser İstatistikleri 2015. https://hsgm.saglik.gov.tr/depo/birimler/kanser-db/istatistik/Trkiye_Kanser_statistikleri_2015.pdf (Erişim Tarihi: 08.08.2021).
• [4] Januchowski, R., Zawierucha, P., Ruciński, M., Nowicki, M., Zabel, M. 2014. Extracellular matrix proteins expression profiling in chemoresistant variants of the A2780 ovarian cancer cell line. Biomed Res Int., 2014:365867.
• [5] Herod, J. J. O., Eliopoulos, A. G., Warwick, J., Niedobitek, G., Young, L. S., Kerr, D. J. 1996. The prognostic significance of Bcl-2 and p53 expression in ovarian carcinoma. Cancer Res, 56(9):2178–84.
• [6] Kahraman, M., Aydin, O., Culha, M. 2009. Size effect of 3D aggregates assembled from silver nanoparticles on surface-enhanced Raman scattering. Chemphyschem, 10(3):537-42.
• [7] Kahraman, M., Mullen, E.R., Korkmaz, A., Wachsmann-Hogiu, S. 2017. Fundamentals and applications of SERS-based bioanalytical sensing. Nanophotonics, 6(5), 831-852.
• [8] Nie, S., Emory, S. R. 1997. Probing Single Molecules and Single Nanoparticles by Surface-Enhanced Raman Scattering. Science, 275(5303):1102-6.
• [9] Suzuki, M., Niidome, Y., Kuwahara, Y., Terasaki, N., Inoue, K., Yamada, S., 2004. Surface-enhanced nonresonance Raman scattering from size-and morphology-controlled gold nanoparticle films. The Journal of Physical Chemistry B, 108(31), 11660-11665.
• [10] Chattopadhyay, S., Lo, H.C., Hsu, C.H., Chen, L. C., Chen, K.H. 2005. Surface-enhanced Raman spectroscopy using self-assembled silver nanoparticles on silicon nanotips. Chemistry of materials, 17(3), 553-559.
• [11] Ciloglu, F.U., Saridag, A.M., Kilic, I.H., Tokmakci, M., Kahraman, M., Aydin, O. 2020. Identification of methicillin-resistant Staphylococcus aureus bacteria using surface-enhanced Raman spectroscopy and machine learning techniques. Analyst, 145(23), 7559-7570.
• [12] Aydin, Ö., Kahraman, M., Kiliç, E., Çulha, M., 2009. Surface-enhanced Raman scattering of rat tissues. Applied spectroscopy, 63(6), 662-668.
• [13] Aydin, Ö., Altaş, M., Kahraman, M., Bayrak, Ö. F., Çulha, M. 2009. Differentiation of healthy brain tissue and tumors using surface-enhanced Raman scattering. Applied spectroscopy, 63(10), 1095-1100.
• [14] Turkevich, J., Stevenson, P.C., Hillier, J., 1951. A study of the nucleation and growth processes in the synthesis of colloidal gold. Discussions of the Faraday Society, 11, 55-75.
• [15] Altunbek, M., Kuku, G., Culha, M., 2016. Gold nanoparticles in single-cell analysis for surface enhanced Raman scattering. Molecules, 21(12), 1617.
• [16] Chithrani, B.D., Ghazani, A.A., Chan, W.C., 2006. Determining the size and shape dependence of gold nanoparticle uptake into mammalian cells. Nano letters, 6(4), 662-668.
• [17] Kuku, G., Altunbek, M., Culha, M., 2017. Surface-enhanced Raman scattering for label-free living single cell analysis. Analytical chemistry, 89(21), 11160-11166.
• [18] Altunbek, M., Çetin, D., Suludere, Z., Çulha, M. 2019. Surface-enhanced Raman spectroscopy based 3D spheroid culture for drug discovery studies. Talanta, 191:390-9.
• [19] Huefner, A., Kuan, W.L., Müller, K.H., Skepper, J.N., Barker, R.A., Mahajan, S. 2016. Characterization and visualization of vesicles in the endo-lysosomal pathway with surface-enhanced Raman spectroscopy and chemometrics. ACS nano, 10(1), 307-316.
• [20] Yılmaz, D., Culha, M. 2021. Investigation of the pathway dependent endocytosis of gold nanoparticles by surface-enhanced Raman scattering. Talanta, 225, 122071.
• [21] Moradi, H., Ahmad, A., Shepherdson, D., Vuong, N.H., Niedbala, G., Eapen, L., Vanderhyden, B., Nyiri, B., Murugkar, S. 2017. Raman micro‐spectroscopy applied to treatment resistant and sensitive human ovarian cancer cells. Journal of biophotonics, 10(10), 1327-1334.
• [22] Öztaş, D.Y., Altunbek, M., Uzunoglu, D., Yılmaz, H., Çetin, D., Suludere, Z., Çulha, M. 2019. Tracing size and surface chemistry-dependent endosomal uptake of gold nanoparticles using surface-enhanced Raman scattering. Langmuir, 35(11), 4020-4028.