Türkiye’de Sık Rastlanan Salmonella Enteritidis Serovarlarına Spesifik Bakteriyofajların İzolasyonu

Yıl 2018, Cilt: 29 Sayı: 2, 136 - 142, 30.12.2018

Zafer Ata

https://doi.org/10.35864/evmd.513532

Cited By: 2

Öz

Birçok ülkede önemli halk sağlığı sorunu olan S. Enteritidis, hayvanlardan ve gıdalardan izole edilen en yaygın

Salmonella serotiplerinden biridir. Hayvanların bakteriyel infeksiyonlarının kontrolünde bakteriyofaj kullanımı, son yıllarda

üzerinde araştırma yapılan konular arasındadır. Bu çalışmada, ülkemizde kanatlılardan en çok izole edilen Salmonella

serotiplerinden biri olan S. Enteritidis (15 adet), bakteriyofajların konak hedef hücreleri olarak kullanıldı. Virulent

bakteriyofajların izolasyonu ve zenginleştirilmesi amacıyla overlay-agar yöntemi seçildi. İzole edilen bakteriyofajların

hedef bakteri suşları üzerindeki litik aktiviteleri spot test uygulaması ile belirlenerek değerlendirildi. Türkiye’nin farklı

bölgelerinde bulunan ticari broyler tesislerinden S. Enteritidis üzerinde litik etki gösteren fajların izolasyonu için alınan

toplam 78 adet örnek (tavuk dışkı, kümes atık suları, kümes altlık) bakteriyofaj izolasyonu amacıyla test edildi. Bu örneklerden

toplam 22 adet S. Enteritidis’e spesifik fajın purifikasyonu gerçekleştirildi. Yapılan bu çalışmada, Af1-Ka ve

Af3-Ka fajları, test edilen 15 adet S. Enteritidis suşunu sırasıyla %78’ini ve %71’ini lize ederek geniş bir konak spektrumu

göstermiştir. Bu iki bakteriyofajın ileri faj karakterizasyonu ve tiplendirilmesinin yapılmasıyla, kanatlı endüstrisindeki

bakterileri kontrol etmede kullanılacak etkili bakteriyofajın seçilmesi için bir temel oluşturulmasında yardımcı

olabileceği kanısına varılmıştır.

Anahtar Kelimeler

Bakteriyofaj, Biyokontrol, İzolasyon, Salmonella Enteritidis

Kaynakça

• 1. Ackermann HW, Audurier A, Berthiaume L, Jones LA, Mayo JA, Vidaver AK, (1978). Guidelines for bacteriophage characterization. Adv Virus Res. 23, 1–24.
• 2. Akan M, (2008). Kanatlılarda salmonella infeksiyonları ve kontrolünde temel prensipler. Veteriner Tavukçuluk Derneği Mektup Ankara Dergisi 6(2), 3-4
• 3. Aksakal A, (2003) Bazı kanatlıların dışkılarında Salmonella türlerinin varlığı ve yaygınlığı ile antibiyotiklere duyarlılıkları. YYÜ Vet. Fak. Derg. 14 (1), 95-101.
• 4. Atterbury RJ, Van Bergen MAP, Ortiz F, Lovell MA, Harris JA, De Boer A, Wagenaar JA, Allen VM, Barrow PA, (2007). Bacteriophage therapy to reduce Salmonella colonization of broiler chickens. Appl Environ Microbiol. 73, 4543-4549.
• 5. Barrow P, Lovell M, Berchieri AJ, (1998). Use of lytic bacteriophage for control of experimental Escherichia coli septicemia and meningitis in chickens and calves. Clin Diag Lab Immunol. 5, 294-298.
• 6. Bielke L, Higgins S, Donoghue A, Donoghue D, Hargis BM, (2007). Salmonella host range of bacteriophages that infect multiple genera. Poult. Sci. 86(12), 2536-2540.
• 7. Carey-Smith GV, Billington C, Cornelius AJ, Hudson JA, Heinemann JA, (2006). Isolation and characterization of bacteriophages infecting Salmonella spp. FEMS Microbiol Lett. 258, 182-186.
• 8. Cherry WB, Davis BR, Edwards PR, Hogan RB, (1954). A simple procedure for the identification of the genus Salmonella by means of a specific bacteriophage. J Lab Clin Med. 44, 51-55.
• 9. Dıbner JJ, Richards JD, (2005). Antibiotic growth promoters in agriculture: history and mode of action. Poult Sci. 84, 634-643.
• 10. Felıx A, Callow BR, (1943). Typing of paratyphoid B bacilli by means of Vi bacteriophage. Brit Med J. I2, 127– 130.
• 11. Fıorentın L, Vieira ND, Barioni WJ, (2005). Oral treatment with bacteriophages reduces the concentration of Salmonella Enteritidis PT4 in caecal contents of broilers. Avian Pathol. 34, 258-263.
• 12. Hıggıns JP, Higgins SE, Guenther KL, Huff W, Donoghue AM, Donoghue DJ, Hargis BM, (2005). Use of a specific bacteriophage treatment to reduce Salmonella in poultry products. Poult Sci. 84, 1141-1145.
• 13. Higgins JP, Andreatti Filho RL, Higgins SE, Wolfenden AD, Tellez G, Hargis BM, (2008). Evaluation of Salmonella-lytic properties of bacteriophages isolated from commercial broiler houses. Avian Dis. 52, 139-142.
• 14. Huff WE, Huff GR, Rath NC, Balog JM, Donoghue AM, (2005). Alternative to antibiotics utilization of bacteriophage to treat colibacillosis and prevent food born pathogens. Poult Sci. 84, 655-659.
• 15. Kang HW, Kim JW, Jung TS, Woo GJ, (2013). Wksl3, a new biocontrol agent for Salmonella enterica Serovars Enteritidis and Typhimurium in foods: Characterization, application, sequence analysis, and oral acute toxicity study. Appl Environ Microbiol. 79(6), 1956-1968.
• 16. Kudva IT, Jelacıc S, Tarr PI, Youderıan P, Hovde JC, (1999). Biocontrol of Escherichia coli O157 with O157- specific bacteriophages. Appl Environ Microbiol. 65(9), 3767-3773.
• 17. Kutateladze M, Adamia R, (2010). Bacteriophages as potential new therapeutics to replace or supplement antibiotics. Trends Biotechnol. 28(12), 591-595.
• 18. Kwon HJ, Cho SH, Kim TE, Won YJ, Jeong J, Park SC, Kim JH, Yoo HS, Park YH, Kim SJ, (2008). Characterization of a T7-like lytic bacteriophage (SG-JL2) of Salmonella enterica Serovar Gallinarum Biovar Gallinarum. Appl Environ Microbiol. 74(22), 6970-6979.
• 19. Lappe ND, Doran G, O’Connor J, O’Hare C, Cormican M, (2009). Characterization of bacteriophages used in the Salmonella enterica serovar Enteritidis phage- typing scheme. J Med Microbiol. 58, 86-93.
• 20. Sklar IB, Joerger RD, (2001). Attempts to utilize bacteriophage to combat salmonella enterica serovar enteritidis infection in chickens. J Food Saf. 21(1), 15-29.
• 21. Slavik MF, Kim JW, Pharr MD, Raben DP, Tsai S, Lobsinger CM, (1995). Effect of trisodium phosphate on campylobacter attached to post-chill chicken carcasses. J Food Prot. 57, 324-326.
• 22. Tang D, Zhang P, Zhang Q, Xue F, Ren J, Sun J, Qu Z, Zhuge X, Li D, Wang J , Jiang M, Dai J, (2018). Isolation and characterization of a broad-spectrum phage of multiple drug resistant Salmonella and its therapeutic utility in mice. Microb Pathog. doi:10.1016/j.micpath.2018.10.042.