Biyofilm pozitif Staphylococcus epidermidis icaA gen ekspresyonuna, Lactobacillus acidophilus ATCC 4356 kökeninin etkisinin in-vitro incelenmesi
Öz
Amaç: S. epidermidis biyofilm oluşumu, bu bakterilerin antibakteriyel ilaçlara ve bağışıklık sistemi savunmasına karşı koruyan önemli bir bariyer görevi oluşturmaktadır. IcaA geni bunun oluşumu için önemlidir. Lactobacillus türlerinin probiyotik etkileri bilinmektedir. Bizde çalışmamızda, CRA yöntemi ile biyofilm pozitifliği saptanan S. epidermidis kökenlerinin icaA gen ekspresyonuna, L. acidophilus ATCC 4356 kökeninin in-vitro etkisinin incelenmesi amaçladık.
Materyal ve metod: Haziran – Aralık 2017 döneminde klinik örneklerden izole edilmiş olan ve CRA metodu ile biyofilm üretimi pozitif olarak saptanan yirmi (20) S. epidermidis kökeni çalışmamıza dahil edildi. CRA’da siyah pozitif kolonilerden, 2 McFarland’lık süspansiyonundan 250 mL alınarak, L. acidophilus içeren ve içermeyen 2 tüpe ilave edildi ve %5CO2’li ortamda 37oC’da inkübasyona bırakıldı. Inkübasyonun 6. saatinde, tüplerden RNA izolasyonları gerçekleştirildi. cDNA sentezi sonrası, spesifik primerler ile LightCycler480 sisteminde real-time PCR yöntemi ile çalışıldı. Gruplara ait sonuçlar delta delta Ct yöntemi ile oluşturularak, Mann-Whitney U testi ile istatistiksel olarak incelendi.
Bulgular: L. acidophilus ATCC 4356 etkileşimi sonrasında S. epidermidis kökenlerinde icaA gen ekspresyon seviyesinde gözlenen upregulasyon, istatistiksel olarak anlamlı düzeyde bulundu (p<0.0001).
Sonuç: Sonuç olarak, çalışmamızda, in-vitro olarak, biyofilm
yeteneği olan S. epidermidis
kökenlerinin probiyotik etkili L.
acidophilus ile etkileşimi sonrası icaA
gen ekspresyon düzeyinde upregulasyon gösterdiğini saptadık. Diğer
probiyotikleri de kapsayacak şekilde daha geniş kapsamlı bakteri-bakteri
etkileşimi çalışmalarının yapılarak yeni stratejilerin geliştirilebileceği
kanaatindeyiz.
Anahtar Kelimeler
Kaynakça
- Büttner H, Mack D, Rohde H. Structural basis of Staphylococcus epidermidis biofilm formation: mechanisms and molecular interactions. Frontiers in Cellular and Infection Microbiology. 2015; 5:14. doi:10.3389/fcimb.2015.00014.
- Otto M. Molecular basis of Staphylococcus epidermidis infections. Seminars in Immunopathology. 2012; 34(2):201-214. doi:10.1007/s00281-011-0296-2.
- Sabaté Brescó M, Harris LG, Thompson K, et al. Pathogenic Mechanisms and Host Interactions in Staphylococcus epidermidis Device-Related Infection. Frontiers in Microbiology. 2017; 8:1401. doi:10.3389/fmicb.2017.01401.
- Rogers KL, Fey PD, Rupp ME. Coagulase-negative staphylococcal infections. Infect Dis Clin North Am. 2009; 23(1):73-98. doi: 10.1016/j.idc.2008.10.001.
- Hogan S, Stevens NT, Humphreys H, O'Gara JP, O'Neill E. Current and future approaches to the prevention and treatment of staphylococcal medical device-related infections. Curr Pharm Des. 2015; 21(1):100-13.
- Salgueiro VC, Iorio NLP, Ferreira MC, Chamon RC, dos Santos KRN. Methicillin resistance and virulence genes in invasive and nasal Staphylococcus epidermidis isolates from neonates. BMC Microbiology. 2017; 17:15. doi:10.1186/s12866-017-0930-9.
- Gerke C, Kraft A, Süssmuth R, Schweitzer O, Götz F. Characterization of the N-acetylglucosaminyltransferase activity involved in the biosynthesis of the Staphylococcus epidermidis polysaccharide intercellular adhesin. J Biol Chem. 1998; 273(29):18586-93.
- Härtel C, Pagel J, Spiegler J, et al. Lactobacillus acidophilus/Bifidobacterium infantis probiotics are associated with increased growth of VLBWI among those exposed to antibiotics. Scientific Reports. 2017; 7:5633. doi:10.1038/s41598-017-06161-8.
Ayrıntılar
Birincil Dil
Türkçe
Konular
Klinik Tıp Bilimleri
Bölüm
Araştırma Makalesi
Yayımlanma Tarihi
12 Aralık 2018
Gönderilme Tarihi
26 Eylül 2018
Kabul Tarihi
25 Ekim 2018
Yayımlandığı Sayı
Yıl 2018 Cilt: 15 Sayı: 3