Araştırma Makalesi
BibTex RIS Kaynak Göster

Balıklardan İzole Edilen Bazı Bakteriyel Patojenlere Karşı Tannik Asidin Antibakteriyal Etkisinin Belirlenmesi

Yıl 2021, , 532 - 539, 31.12.2021
https://doi.org/10.35229/jaes.1004833

Öz

Bu çalışmada, bitkilerden doğal ekstraksiyon işlemiyle elde edilen ve su ürünleri yetiştiriciliğinde tatlandırıcı yem katkı maddesi olarak kullanılan Silvafeed TSP (tannik asit) antimikrobiyal duyarlılığı araştırıldı. Balıklarda önemli ekonomik kayıplara neden olan Aeromonas hydrophila, Pseudomonas fluorescens, Yersinia ruckeri ve Vibrio anguillarum izolatlarına karşı tannik asitin farklı konsantrasyonlardaki dilüsyonlarının antimikrobiyal duyarlılığı tespit edildi. Çalışmada kullanılan bakterilerin antibiyogram test sonuçlarına göre Ps. fluoresens gentamisin ve doksisiklin hariç hepsine dirençli olduğu, diğer bakterilerin (A. hydrophila, E. coli, V. anguillarum ve Y. ruckeri) ise ampisilin hariç diğer antibiyotiklere karşı hassas olduğu tespit edildi. Tannik asitin beş farklı bakteri türlerine karşı antimikrobiyal hassasiyet test sonuçlarına göre, tannik asitin 125 µg/ml üzerindeki konsantrasyonları Ps. fluorescens ve V. anguillarum'a duyarlı olduğu tespit edildi. Aynı çalışmada E. coli, A. hydrophila ve Y. ruckeri ise 250 µg/ml üzerindeki konsantrasyonların hassas olduğu tespit edildi. Ps. fluoresens izolatının florfenikol (FFC)’ün 2000 µg/ml hariç bütün konsantrasyonları ve E. coli izolatının sadece FFC’nin 31,25 µg/ml konsantrasyonuna dirençli olmasına karşın doksisiklin beş bakteri izolatına karşı duyarlı olduğu belirlendi. Tannik asitin 31.25 µg/ml konsantrasyonun ve Ps. fluorescens ve V. anguillarum dirençli iken, 62.5 µg/ml konsantrasyonuna ise A. hydrophila ve Y. ruckeri'nin dirençli olduğu belirlendi. Tannik asitin MİK değerleri A. hydrophila, Ps. fluoresens, V. anguillarum ve Y. rukeri için sırasıyla, 250 µg/ml, 31,25 µg/ml, 500 µg/ml ve 125 µg/ml olarak tespit edildi.

Destekleyen Kurum

Recep Tayyip Erdoğan Üniversitesi BAP Birimi

Proje Numarası

FYL-2019-994

Teşekkür

Recep Tayyip Erdoğan Üniversitesi BAP Birimi

Kaynakça

  • Aydın, S.A. & Üstün, F. (2007). Tanenler 1. Kimyasal yapıları, farmakolojik etkileri, analiz yöntemleri. İstanbul Üniversitesi Veteriner Fakakültesi Dergisi, 33(1), 21-31.
  • Bae, H.D., McAllister, T.A., Yanke, L.J., Cheng, K.J. & Muir, A.D. (1993). Effects of condensed tannins on enduglucanase activity and filter paper digestion by Fibrobacter succinogenes S85, Applied And Environmental Microbiology, 59, 2132-2138. DOI: 10.1128/aem.59.7.2132-2138.1993
  • Balta, F. & Çaırgan, H. (2007). Levrek’lerde (Dicentrarchus labrax L., 1758) sağaltım sonrası oksitetrasiklinin kas ve derideki rezidüsünün belirlenmesi. E.U. Journal of Fisheries & Aquatic Sciences, 24(1), 173-178.
  • Balta, F. & Çaırgan, H. (2010). Oxytetracycline residues in cultured gilthead sea bream (Sparus aurata L. 1758) tissues. African Journal of Biotechnology, 9(42), 7192-7196.
  • Balta, F. & Dengiz Balta Z. (2019). The isolation of Lactococcus garvieae from eyes of diseased rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) with exopthalmia. Journal of Anatolian Environmental and Animal Sciences, 4(1), 27-33. DOI: 10.35229/jaes.527258
  • Balta, F. & Dengiz Balta, Z. (2016). Deniz suyuna nakledilen gökkuşağı alabalığı (Oncorhynchus mykiss) yavrularında görülen vibrio enfeksiyonu ve tedavisi. Anadolu Çevre ve Hayvancılık Bilimleri Dergisi, 1(1), 14-20.
  • Balta, F. & Dengiz Balta, Z. (2017). Doğu Karadeniz’de yetiştiriciliği yapılan gökkuşağı alabalıkları (Oncorhynchus mykiss)’ndan izole edilen Vibrio anguillarum suşlarının serotiplendirilmesi, genetik karakterizasyonu ve antimikrobiyal duyarlılığının belirlenmesi. Ankara Üniversitesi Veteriner Fakültesi Dergisi, 64, 321-328.
  • Balta, F. & Dengiz Balta, Z. (2019). Preparation of O-antigen from Yersinia ruckeri serotype O1 and use in the slide ggglutination test. Anatolian Env. and Anim. Sciences, 4(3), 480-483.
  • Balta, F. & Yılmaz, H. (2019). Kültür Levreklerinde (Dicentrarchus labrax) Vibrio parahaemolyticus Enfeksiyonu. Journal of Anatolian Environmental and Animal Sciences, 4(2), 104-110. DOI: 10.35229/jaes.544439
  • Balta, F. (1999). Levrek (Dicentrarchus labrax L., 1758) balıklarında sağaltım sonrası oksitetrasiklin rezidüsünün belirlenmesi. Doktora Tezi, Ege Üniversitesi Fen Bilimleri Enstitüsü, İzmir, 93s.
  • Balta, F. (2016). Phenotypic, serotypic and genetic characterization and antimicrobial susceptibility determination of Vibrio anguillarum, isolatedf cultured sea bass (Dicentrarchus labrax L., 1758) in the southeast Black Sea, Turkey. Fresenius Environmental Bulletin, 25(10), 4393-4400.
  • Balta, F. (2020). Fırtına Deresindeki gökkuşağı alabalık çiftliklerinde izole edilen Aeromonas spp. izolatlarının antimikrobiyel hassasiyetin belirlenmesi. Anadolu Çev. ve Hay. Dergisi, 5(3), 397-407.
  • Balta, F., Dengiz Balta, Z., Ozgumus, O.B. & Çağırgan, H. (2016). Doğu Karadeniz Bölgesi’ndeki gökkuşağı alabalığı (Oncorhynchus mykiss) çiftliklerinde Yersinia ruckeri’nin portörlük yönünden tetkiki ve antimikrobiyal direncin tespiti. Anadolu Çevre ve Hayvancılık Bilimleri Dergisi, 3(1), 72-76.
  • Balta, F., Sandalli, C., Kayis, S. & Ozgumus, O.B. (2010). Molecular analysis of antimicrobial resistance in Yersinia ruckeri strains isolated from rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) grown in commercial fish farms in Turkey. Bulletin of the European Association of Fish Pathologists, 30(6), 211-219.
  • Brooker, J.D., O´Donovan, L.A., Skene, I., Clarke, K., Blackall, L. & Muslera, P. (1994). Streptococcus caprinus sp. nov., a tannin-resistant ruminal bacterium from feral goats. Letters in Applied Microbiology, 18, 313-318. DOI: 10.1111/j.1472-765X.1994.tb00877.x
  • Cagirgan, H. & Tanrikul, T.T. (1998). Testing the effectiveness of a Yersinia vaccine in infected and chemically treated juvenile rainbow trout (Oncorhynchus mykiss). Journal of Applied Ichthyology, 14, 239-243.
  • Cipriano Salazara, M., Rojas Hernándeza, S., Olivares Péreza, J., Jiménez Guillénb, R., Cruz Lagunasc, B., Camacho Díaza, L.M. & Ugbogud, A E. (2018). Antibacterial activities of tannic acid against isolated ruminal bacteria from sheep. Microbial Pathogenesis, 117, 255-258. DOI: 10.1016/j.micpath.2018.01.045
  • CLSI. (20013). Performance Standards for Antimicrobial Susceptibility Testing; Twenty-Third Informational Supplement. CLSI document M100-S23. Vol. 33, No.1, Wayne, PA.
  • CLSI. (2014). Performance standards for antimicrobial susceptibility testing. Twenty-Fourth Informational Supplement. Clinical Laboratory Standards Institute, Wayne, USA, M100-S24, 230.
  • Dinçtürk E. & Tanrıkul T.T. (2021). Yersinia ruckeri and Pseudomonas fluorescens co-infection inrainbow trout (Oncorhynchus mykiss Walbaum, 1792). Aquaculture Research, Aquaculture Research, 52(10), 4858-4866. DOI: 10.1111/are.15320
  • Duman, M., Altun, S., Cengiz, M., Saticioglu, I.B., Buyukekiz, A.G. & Sahinturk, P. (2017). Genotyping and antimicrobial resistance genes of Yersinia ruckeri isolates from rainbow trout farms. Diseases of Aquatic Organisms, 125, 31-44. DOI: 10.3354/dao03132
  • EL-Hefny, M., Ashmawy, N.A., Salem, M.Z.M. & Salem, A.Z.M. (2017). Antibacterial activities of the phytochemicals-characterized extracts of Callistemon viminalis, Eucalyptus camaldulensis and Conyza dioscoridis against the growth of some phytopathogenic bacteria. Microbial Pathogenesis, 113, 348-356. DOI: 10.1016/j.micpath.2017.11.004
  • Goel, G., Puniya, A.K. and Singh, K. (2005). Tannic acid resistance in ruminal streptococcal isolates. Journal of Basic Microbiology, 45, 243-245. DOI: 10.1002/jobm.200410517
  • Harikrishnan, R., Balasundaram, C. & Heo, M.S. (2012). Effect of Inonotus obliquus enriched diet on hematology, immune response, and disease protection in kelp grouper, Epinephelus bruneus against Vibrio harveyi. Aquaculture, 344-349, 48-53. DOI: 10.1016/j.aquaculture.2012.03.010
  • Kaczmarek, B. (2020). Tannic acid with antiviral and antibacterial activity as a promising component of biomaterials-a minireview. Materials, 13, 3224, DOI: 10.3390/ma13143224
  • NCLLS. (1993). Performance standards for antimicrobial disk susceptibility tests. Approved standard. NCCLS document M2-A5. Wayne, Pa: National Committee for Clinical Laboratory Standards.
  • Onuk, E.E., Çaycı, Y.T., Çoban, A.Y., Çiftci, A., Balta, F., Didinen, B.I., Pekmezci, G.Z., Altun, S., Ünlü, M.S. ve Deveci, A. (2015). Türkiye’de su kaynaklı Aeromonas izolatlarında saptanan ilk QnrS gen Pozitifliği. Mikrobiyoloji Bülteni, 49(1), 114-123.
  • Onuk, E.E., Çaycı, Y.T., Çoban, A.Y., Çiftci, A., Balta, F., Didinen, B.I. ve Altun, S. (2017). Balık ve yetiştirme suyu kökenli Aeromonas izolatlarının antimikrobial duyarlılıklarının saptanması. Ankara Üniv Vet Fak Derg, 64(1), 69-73.
  • Önalan, Ş. & Çevik M. (2020). Investigation of the effects of some phytochemicals on Yersinia ruckeri and antimicrobial resistance. Brazilian Journal of Biology, 80(4), 934-942. DOI: 10.1590/1519-6984.234969
  • Pavaraj, M., Balasubramanian, V., Baskaran, S. & Ramasamy P. (2011). Development of immunity by extract of medicinal plant Ocimum sanctum on common carp Cyprinus carpio (L.). Research Journal of Immunology, 4(1), 12-18. DOI: 10.3923/rji.2011.12.18
  • Pérez-Fonseca, A., Alcala-Canto, Y., Salem, A.Z.M. & Alberti-Navarro, A.B. (2016). Anticoccidial efficacy of naringenin and a grapefruit peel extract in growing lambs naturally-infected with Eimeria spp. Veterinary Parasitology, 232, 58-65. DOI: 10.1016/j.vetpar.2016.11.009
  • Salem, A.Z.M., Robinson, P.H., Lopez, S., Gohar, Y.M., Rojo, R. & Tinoco, J.L. (2010). Sensitivity of sheep intestinal lactic acid bacteria to secondary compounds extracted from Acacia saligna leaves. Animal Feed Science and Technology, 161, 85-93. DOI: 10.1016/j.anifeedsci.2010.08.003
  • Schiavone, A., Gua, K., Tassone, S., Gasco, Hernandez, E., Denti, R. & Zoccarato, I. (2008). Effects of a natural extract of chestnut wood on digestibility, performance traits, and nitrogen balance of broiler chicks. Poultry Science, 87(3), 521-527. DOI: 10.3382/ps.2007-00113
  • Sell, D.R., Reed W.M., Chrisman, C.L. & RoglerJ.C. (1985). Mucin excretion and morphology of the intestinal tract as influenced by sorgunm tannins. Nutrition Raports İnternational, 31, 13691374.
  • Spencer, C.M., Cal, Y., Martin, R., Gaffney, S.H., Goulding, P.N., Magnolato, D., Lilley, T.H. & Haslam, E. (1988). Polyphenol complexation: some thoughts and observations, Phytochemistry, 27, 2397-2409. DOI: 10.1016/0031-9422(88)87004-3
  • Takaoka, O., Ji, S.C., Ishimaru, K., Lee, S.W., Jeong, G.S., Ito, J., Biswas, A. & Takii, K. (2011). Effect of rotifer enrichment with herbal extracts on growth and resistance of red sea bream, Pagrus majör (Temminck & Schlegel) larvae against Vibrio anguillarum. Aquaculture Research, 42, 1824-1829. DOI: 10.1111/j.1365-2109.2010.02783.x
  • Tanrikul, T.T. & Dincturk, E. (2017). Antibacterial susceptibility of hydrolysable tannins (Silvafeed TSP) against bacterial fish pathogens. Aquaculture Europe 2017, October 17-20, Dubrovnik, Croatia.
  • Yılmaz, Y. & Romeo, T.T. (2004). Major flavomolds in grapeseeds and skins: antioxidant capacity of catechin, epicatechin, and gallic acid. Journal of Agricultural and Food Chemistry, 52(2), 255-260. DOI: 10.1021/jf030117h
  • Zoccarato, I., Gasco, L., Schiavone, A., Guo, K., Barge, P., Rotolo, L., Savarino, G. & Masoero, G. (2008). Effect of extract of chestnut wood inclusion (ENC) in normal and low protein amino acid supplemented diets on heavy broiler rabbits. In Proceedings of the 9th world rabbit congress (pp. 873-877), 10-13 June 2008, Verona, Italy.
  • Zoccarato, I., Schiavone, A., Tassone, S., Gasco, L. & Malfatto, V. (2006). Study on the utilisation of a natural silvafeed in the nutrition of heavy chickens. XII European Poultry Conference, Verona (Italy).

Determination of Antibacterial Effect of Tannic Acid Against Some Bacterial Pathogens Isolated from Fish

Yıl 2021, , 532 - 539, 31.12.2021
https://doi.org/10.35229/jaes.1004833

Öz

Bu çalışmada, bitkilerden doğal ekstraksiyon işlemiyle elde edilen ve su ürünleri yetiştiriciliğinde tatlandırıcı yem katkı maddesi olarak kullanılan Silvafeed TSP (tannik asit) antimikrobiyal duyarlılığı araştırıldı. Balıklarda önemli ekonomik kayıplara neden olan Aeromonas hydrophila, Pseudomonas fluorescens, Yersinia ruckeri ve Vibrio anguillarum izolatlarına karşı tannik asitin farklı konsantrasyonlardaki dilüsyonlarının antimikrobiyal duyarlılığı tespit edildi. Çalışmada kullanılan bakterilerin antibiyogram test sonuçlarına göre Ps. fluoresens gentamisin ve doksisiklin hariç hepsine dirençli olduğu, diğer bakterilerin (A. hydrophila, E. coli, V. anguillarum ve Y. ruckeri) ise ampisilin hariç diğer antibiyotiklere karşı hassas olduğu tespit edildi. Tannik asitin beş farklı bakteri türlerine karşı antimikrobiyal hassasiyet test sonuçlarına göre, tannik asitin 125 µg/ml üzerindeki konsantrasyonları Ps. fluorescens ve V. anguillarum'a duyarlı olduğu tespit edildi. Aynı çalışmada E. coli, A. hydrophila ve Y. ruckeri ise 250 µg/ml üzerindeki konsantrasyonların hassas olduğu tespit edildi. Ps. fluoresens izolatının florfenikol (FFC)’ün 2000 µg/ml hariç bütün konsantrasyonları ve E. coli izolatının sadece FFC’nin 31,25 µg/ml konsantrasyonuna dirençli olmasına karşın doksisiklin beş bakteri izolatına karşı duyarlı olduğu belirlendi. Tannik asitin 31.25 µg/ml konsantrasyonun ve Ps. fluorescens ve V. anguillarum dirençli iken, 62.5 µg/ml konsantrasyonuna ise A. hydrophila ve Y. ruckeri'nin dirençli olduğu belirlendi. Tannik asitin MİK değerleri A. hydrophila, Ps. fluoresens, V. anguillarum ve Y. rukeri için sırasıyla, 250 µg/ml, 31,25 µg/ml, 500 µg/ml ve 125 µg/ml olarak tespit edildi.

Proje Numarası

FYL-2019-994

Kaynakça

  • Aydın, S.A. & Üstün, F. (2007). Tanenler 1. Kimyasal yapıları, farmakolojik etkileri, analiz yöntemleri. İstanbul Üniversitesi Veteriner Fakakültesi Dergisi, 33(1), 21-31.
  • Bae, H.D., McAllister, T.A., Yanke, L.J., Cheng, K.J. & Muir, A.D. (1993). Effects of condensed tannins on enduglucanase activity and filter paper digestion by Fibrobacter succinogenes S85, Applied And Environmental Microbiology, 59, 2132-2138. DOI: 10.1128/aem.59.7.2132-2138.1993
  • Balta, F. & Çaırgan, H. (2007). Levrek’lerde (Dicentrarchus labrax L., 1758) sağaltım sonrası oksitetrasiklinin kas ve derideki rezidüsünün belirlenmesi. E.U. Journal of Fisheries & Aquatic Sciences, 24(1), 173-178.
  • Balta, F. & Çaırgan, H. (2010). Oxytetracycline residues in cultured gilthead sea bream (Sparus aurata L. 1758) tissues. African Journal of Biotechnology, 9(42), 7192-7196.
  • Balta, F. & Dengiz Balta Z. (2019). The isolation of Lactococcus garvieae from eyes of diseased rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) with exopthalmia. Journal of Anatolian Environmental and Animal Sciences, 4(1), 27-33. DOI: 10.35229/jaes.527258
  • Balta, F. & Dengiz Balta, Z. (2016). Deniz suyuna nakledilen gökkuşağı alabalığı (Oncorhynchus mykiss) yavrularında görülen vibrio enfeksiyonu ve tedavisi. Anadolu Çevre ve Hayvancılık Bilimleri Dergisi, 1(1), 14-20.
  • Balta, F. & Dengiz Balta, Z. (2017). Doğu Karadeniz’de yetiştiriciliği yapılan gökkuşağı alabalıkları (Oncorhynchus mykiss)’ndan izole edilen Vibrio anguillarum suşlarının serotiplendirilmesi, genetik karakterizasyonu ve antimikrobiyal duyarlılığının belirlenmesi. Ankara Üniversitesi Veteriner Fakültesi Dergisi, 64, 321-328.
  • Balta, F. & Dengiz Balta, Z. (2019). Preparation of O-antigen from Yersinia ruckeri serotype O1 and use in the slide ggglutination test. Anatolian Env. and Anim. Sciences, 4(3), 480-483.
  • Balta, F. & Yılmaz, H. (2019). Kültür Levreklerinde (Dicentrarchus labrax) Vibrio parahaemolyticus Enfeksiyonu. Journal of Anatolian Environmental and Animal Sciences, 4(2), 104-110. DOI: 10.35229/jaes.544439
  • Balta, F. (1999). Levrek (Dicentrarchus labrax L., 1758) balıklarında sağaltım sonrası oksitetrasiklin rezidüsünün belirlenmesi. Doktora Tezi, Ege Üniversitesi Fen Bilimleri Enstitüsü, İzmir, 93s.
  • Balta, F. (2016). Phenotypic, serotypic and genetic characterization and antimicrobial susceptibility determination of Vibrio anguillarum, isolatedf cultured sea bass (Dicentrarchus labrax L., 1758) in the southeast Black Sea, Turkey. Fresenius Environmental Bulletin, 25(10), 4393-4400.
  • Balta, F. (2020). Fırtına Deresindeki gökkuşağı alabalık çiftliklerinde izole edilen Aeromonas spp. izolatlarının antimikrobiyel hassasiyetin belirlenmesi. Anadolu Çev. ve Hay. Dergisi, 5(3), 397-407.
  • Balta, F., Dengiz Balta, Z., Ozgumus, O.B. & Çağırgan, H. (2016). Doğu Karadeniz Bölgesi’ndeki gökkuşağı alabalığı (Oncorhynchus mykiss) çiftliklerinde Yersinia ruckeri’nin portörlük yönünden tetkiki ve antimikrobiyal direncin tespiti. Anadolu Çevre ve Hayvancılık Bilimleri Dergisi, 3(1), 72-76.
  • Balta, F., Sandalli, C., Kayis, S. & Ozgumus, O.B. (2010). Molecular analysis of antimicrobial resistance in Yersinia ruckeri strains isolated from rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) grown in commercial fish farms in Turkey. Bulletin of the European Association of Fish Pathologists, 30(6), 211-219.
  • Brooker, J.D., O´Donovan, L.A., Skene, I., Clarke, K., Blackall, L. & Muslera, P. (1994). Streptococcus caprinus sp. nov., a tannin-resistant ruminal bacterium from feral goats. Letters in Applied Microbiology, 18, 313-318. DOI: 10.1111/j.1472-765X.1994.tb00877.x
  • Cagirgan, H. & Tanrikul, T.T. (1998). Testing the effectiveness of a Yersinia vaccine in infected and chemically treated juvenile rainbow trout (Oncorhynchus mykiss). Journal of Applied Ichthyology, 14, 239-243.
  • Cipriano Salazara, M., Rojas Hernándeza, S., Olivares Péreza, J., Jiménez Guillénb, R., Cruz Lagunasc, B., Camacho Díaza, L.M. & Ugbogud, A E. (2018). Antibacterial activities of tannic acid against isolated ruminal bacteria from sheep. Microbial Pathogenesis, 117, 255-258. DOI: 10.1016/j.micpath.2018.01.045
  • CLSI. (20013). Performance Standards for Antimicrobial Susceptibility Testing; Twenty-Third Informational Supplement. CLSI document M100-S23. Vol. 33, No.1, Wayne, PA.
  • CLSI. (2014). Performance standards for antimicrobial susceptibility testing. Twenty-Fourth Informational Supplement. Clinical Laboratory Standards Institute, Wayne, USA, M100-S24, 230.
  • Dinçtürk E. & Tanrıkul T.T. (2021). Yersinia ruckeri and Pseudomonas fluorescens co-infection inrainbow trout (Oncorhynchus mykiss Walbaum, 1792). Aquaculture Research, Aquaculture Research, 52(10), 4858-4866. DOI: 10.1111/are.15320
  • Duman, M., Altun, S., Cengiz, M., Saticioglu, I.B., Buyukekiz, A.G. & Sahinturk, P. (2017). Genotyping and antimicrobial resistance genes of Yersinia ruckeri isolates from rainbow trout farms. Diseases of Aquatic Organisms, 125, 31-44. DOI: 10.3354/dao03132
  • EL-Hefny, M., Ashmawy, N.A., Salem, M.Z.M. & Salem, A.Z.M. (2017). Antibacterial activities of the phytochemicals-characterized extracts of Callistemon viminalis, Eucalyptus camaldulensis and Conyza dioscoridis against the growth of some phytopathogenic bacteria. Microbial Pathogenesis, 113, 348-356. DOI: 10.1016/j.micpath.2017.11.004
  • Goel, G., Puniya, A.K. and Singh, K. (2005). Tannic acid resistance in ruminal streptococcal isolates. Journal of Basic Microbiology, 45, 243-245. DOI: 10.1002/jobm.200410517
  • Harikrishnan, R., Balasundaram, C. & Heo, M.S. (2012). Effect of Inonotus obliquus enriched diet on hematology, immune response, and disease protection in kelp grouper, Epinephelus bruneus against Vibrio harveyi. Aquaculture, 344-349, 48-53. DOI: 10.1016/j.aquaculture.2012.03.010
  • Kaczmarek, B. (2020). Tannic acid with antiviral and antibacterial activity as a promising component of biomaterials-a minireview. Materials, 13, 3224, DOI: 10.3390/ma13143224
  • NCLLS. (1993). Performance standards for antimicrobial disk susceptibility tests. Approved standard. NCCLS document M2-A5. Wayne, Pa: National Committee for Clinical Laboratory Standards.
  • Onuk, E.E., Çaycı, Y.T., Çoban, A.Y., Çiftci, A., Balta, F., Didinen, B.I., Pekmezci, G.Z., Altun, S., Ünlü, M.S. ve Deveci, A. (2015). Türkiye’de su kaynaklı Aeromonas izolatlarında saptanan ilk QnrS gen Pozitifliği. Mikrobiyoloji Bülteni, 49(1), 114-123.
  • Onuk, E.E., Çaycı, Y.T., Çoban, A.Y., Çiftci, A., Balta, F., Didinen, B.I. ve Altun, S. (2017). Balık ve yetiştirme suyu kökenli Aeromonas izolatlarının antimikrobial duyarlılıklarının saptanması. Ankara Üniv Vet Fak Derg, 64(1), 69-73.
  • Önalan, Ş. & Çevik M. (2020). Investigation of the effects of some phytochemicals on Yersinia ruckeri and antimicrobial resistance. Brazilian Journal of Biology, 80(4), 934-942. DOI: 10.1590/1519-6984.234969
  • Pavaraj, M., Balasubramanian, V., Baskaran, S. & Ramasamy P. (2011). Development of immunity by extract of medicinal plant Ocimum sanctum on common carp Cyprinus carpio (L.). Research Journal of Immunology, 4(1), 12-18. DOI: 10.3923/rji.2011.12.18
  • Pérez-Fonseca, A., Alcala-Canto, Y., Salem, A.Z.M. & Alberti-Navarro, A.B. (2016). Anticoccidial efficacy of naringenin and a grapefruit peel extract in growing lambs naturally-infected with Eimeria spp. Veterinary Parasitology, 232, 58-65. DOI: 10.1016/j.vetpar.2016.11.009
  • Salem, A.Z.M., Robinson, P.H., Lopez, S., Gohar, Y.M., Rojo, R. & Tinoco, J.L. (2010). Sensitivity of sheep intestinal lactic acid bacteria to secondary compounds extracted from Acacia saligna leaves. Animal Feed Science and Technology, 161, 85-93. DOI: 10.1016/j.anifeedsci.2010.08.003
  • Schiavone, A., Gua, K., Tassone, S., Gasco, Hernandez, E., Denti, R. & Zoccarato, I. (2008). Effects of a natural extract of chestnut wood on digestibility, performance traits, and nitrogen balance of broiler chicks. Poultry Science, 87(3), 521-527. DOI: 10.3382/ps.2007-00113
  • Sell, D.R., Reed W.M., Chrisman, C.L. & RoglerJ.C. (1985). Mucin excretion and morphology of the intestinal tract as influenced by sorgunm tannins. Nutrition Raports İnternational, 31, 13691374.
  • Spencer, C.M., Cal, Y., Martin, R., Gaffney, S.H., Goulding, P.N., Magnolato, D., Lilley, T.H. & Haslam, E. (1988). Polyphenol complexation: some thoughts and observations, Phytochemistry, 27, 2397-2409. DOI: 10.1016/0031-9422(88)87004-3
  • Takaoka, O., Ji, S.C., Ishimaru, K., Lee, S.W., Jeong, G.S., Ito, J., Biswas, A. & Takii, K. (2011). Effect of rotifer enrichment with herbal extracts on growth and resistance of red sea bream, Pagrus majör (Temminck & Schlegel) larvae against Vibrio anguillarum. Aquaculture Research, 42, 1824-1829. DOI: 10.1111/j.1365-2109.2010.02783.x
  • Tanrikul, T.T. & Dincturk, E. (2017). Antibacterial susceptibility of hydrolysable tannins (Silvafeed TSP) against bacterial fish pathogens. Aquaculture Europe 2017, October 17-20, Dubrovnik, Croatia.
  • Yılmaz, Y. & Romeo, T.T. (2004). Major flavomolds in grapeseeds and skins: antioxidant capacity of catechin, epicatechin, and gallic acid. Journal of Agricultural and Food Chemistry, 52(2), 255-260. DOI: 10.1021/jf030117h
  • Zoccarato, I., Gasco, L., Schiavone, A., Guo, K., Barge, P., Rotolo, L., Savarino, G. & Masoero, G. (2008). Effect of extract of chestnut wood inclusion (ENC) in normal and low protein amino acid supplemented diets on heavy broiler rabbits. In Proceedings of the 9th world rabbit congress (pp. 873-877), 10-13 June 2008, Verona, Italy.
  • Zoccarato, I., Schiavone, A., Tassone, S., Gasco, L. & Malfatto, V. (2006). Study on the utilisation of a natural silvafeed in the nutrition of heavy chickens. XII European Poultry Conference, Verona (Italy).
Toplam 40 adet kaynakça vardır.

Ayrıntılar

Birincil Dil Türkçe
Bölüm Makaleler
Yazarlar

Neşe Tekin Bu kişi benim 0000-0001-9734-9871

Fikri Balta 0000-0002-1823-5823

Proje Numarası FYL-2019-994
Yayımlanma Tarihi 31 Aralık 2021
Gönderilme Tarihi 5 Ekim 2021
Kabul Tarihi 30 Kasım 2021
Yayımlandığı Sayı Yıl 2021

Kaynak Göster

APA Tekin, N., & Balta, F. (2021). Balıklardan İzole Edilen Bazı Bakteriyel Patojenlere Karşı Tannik Asidin Antibakteriyal Etkisinin Belirlenmesi. Journal of Anatolian Environmental and Animal Sciences, 6(4), 532-539. https://doi.org/10.35229/jaes.1004833


13221            13345           13349              13352              13353              13354          13355    13356   13358   13359   13361     13363   13364                crossref1.png            
         Paperity.org                                  13369                                         EBSCOHost                                                        Scilit                                                    CABI   
JAES/AAS-Journal of Anatolian Environmental and Animal Sciences/Anatolian Academic Sciences&Anadolu Çevre ve Hayvancılık Dergisi/Anadolu Akademik Bilimler-AÇEH/AAS