Kurşuna Maruz Bırakılan Gammarus pulex’de Antioksidan Enzim Yanıtları
Öz
Bu çalışmada, kurşuna maruz bırakılan G. pulex'de süperoksit dismutaz, katalaz ve glutatyon peroksidaz antioksidan enzimlerinin aktivite yanıtlarının araştırılması amaçlanmaktadır. G. pulex, 96 saat boyunca 10, 30, 50 µg/L kurşun içeren sentetik çözeltilere maruz bırakılmıştır. Süperoksit dismutaz, katalaz ve glutatyon peroksidaz aktiviteleri ELISA kiti kullanılarak belirlenmiştir. Süperoksit dismutaz aktivitelerindeki değişimler istatistiksel olarak anlamlı bulunmamıştır (P>0.05). Kurşuna maruz bırakıldıktan sonra tüm uygulama gruplarında katalaz aktiviteleri azalmıştır (P<0.05). Glutatyon peroksidaz aktiviteleri kurşun maruziyetine bağlı olarak azalmıştır (P>0.05). Bulgularımız, reaktif oksijen türleri üreterek ve sülfhidril bağımlı antioksidan enzim aktivitelerini inhibe ederek kurşunun oksidatif strese neden olabileceğini göstermektedir. Sonuç olarak, antioksidan enzimlerdeki değişiklikler, kurşunun çevresel risk değerlendirmesi için potansiyel olarak hassas biyobelirteçler olarak kullanılabilir ve deşarj standartlarının oluşturulmasına katkıda bulunabilir.
Anahtar Kelimeler
Kaynakça
- Adonaylo, V.N. & Oteiza, P.I. (1999). Lead intoxication: antioxidant defenses and oxidative damage in rat brain. Toxicology, 135, 77-85.
- Ahmad, I., Hamid, T., Fatima, M., Chand, H.S., Jain, S.K., Athar, M. & Raisudd, S. (2000). Induction of hepatic antioxidants in freshwater catfish (Channa punctatus bloch) is a biomarker of paper mill effluent exposure. Biochimica et Biophysica Acta, 1523, 37-48.
- Blokhina, O., Virolainen, E. & Fagerstedt, K.V. (2003). Antioxidants, oxidative damage and oxygen deprivation stress: a review. Annals of Botany, 91, 179–194. Carocci A., Catalano A., Lauria G., Sinicropi M.S. & Genchi G. (2016). Lead toxicity, antioxidant defense and environment, P. de Voogt (ed.). Reviews of Environmental Contamination and Toxicology, 238, XVI, 123p.
- Chaurasia S.S. & Kar A. (1997a). Protective effects of vitamin E against lead induced deterioration of membrane associated type-1 iodothyronine 5’ monodeiodinase (5’D-I) activity in male mice. Toxicology, 124, 203-209.
- Chaurasia S.S. & Kar A. (1997b). Influence of lead on type I iodothyromne 5’ monadeoidinase activity in male Mouse. Hormone and Metabolic Research, 29, 532-533. Chiba M., Shinohara A.K., Matsushita Watanabe H. & Inaba Y. (1996). Indices of lead exposure in blood and urine of lead-exposed workers and concentrations of major and trace elements and activities of SOD, GSH-Px and catalase in their blood. The Tohoku Journal of Experimental Medicine, 178, 49-62.
- Courtois E., Marques M. & Barrientos A. (2003). Lead-induced downregulation of soluble guanylate cyclase in isolated rat aortic segments mediated by reactive oxygen species and cyclooxygenase- 2. Journals of the American Society of Nephrology, 14, 1464–1470.
- Ercal N., Gürer-Orhan H. & Aykin-Burns N. (2001). Toxic metals and oxidative stress part I: mechanisms involved in metal-induced oxidative damage. Current Topics in Medicinal Chemistry, 6, 529-539.
- Farmand F., Ehdaie A., Roberts C.K. & Sindhu R.K. (2005). Lead-induced dysregulation of superoxide dismutases, catalase, glutathione peroxidase, and guanylate cyclase. Environmental Research, 98, 33–39.
- Feldman R.G. & White R.F. (1992). Lead Neurotoxicity and Disorders of Learning. Journal of Child Neurology, 7, 354-359.
- Flora S.J.S. (2009). Structural, chemical and biological aspects of antioxidants for strategies against metal and metalloid exposure. Oxidative Medicine and Cellular Longevity, 2, 191–206.